Dual Regulation of the mitotic exit network (MEN) by PP2A-Cdc55 phosphatase.

Exit from mitosis in budding yeast is triggered by activation of the key mitotic phosphatase Cdc14. At anaphase onset, the protease separase and Zds1 promote the downregulation of PP2A(Cdc55) phosphatase, which facilitates Cdk1-dependent phosphorylation of Net1 and provides the first wave of Cdc14 activity. Once Cdk1 activity starts to decline, the mitotic exit network (MEN) is activated to achieve full Cdc14 activation. Here we describe how the PP2A(Cdc55) phosphatase could act as a functional link between FEAR and MEN due to its action on Bfa1 and Mob1. We demonstrate that PP2A(Cdc55) regulates MEN activation by facilitating Cdc5- and Cdk1-dependent phosphorylation of Bfa1 and Mob1, respectively. Downregulation of PP2A(Cdc55) initiates MEN activity up to Cdc15 by Bfa1 inactivation. Surprisingly, the premature Bfa1 inactivation observed does not entail premature MEN activation, since an additional Cdk1-Clb2 inhibitory signal acting towards Dbf2-Mob1 activity restrains MEN activity until anaphase. In conclusion, we propose a clear picture of how PP2A(Cdc55) functions affect the regulation of various MEN components, contributing to mitotic exit.

Identification and analysis of novel mitotic inhibitors of the Caenorhabditis elegans Aurora B kinase

Proper execution of mitosis requires the accurate segregation of replicated DNA into each daughter cell. The highly conserved mitotic kinase AIR-2/Aurora B is a dynamic protein that interacts with subsets of cofactors and substrates to coordinate chromosome segregation and cytokinesis in Caenorhabdiris elegans. To identify components of the AIR-2 regulatory pathway, a genome-wide RNAi-based screen for suppressors of air-2 temperature-sensitive mutant lethality was conducted. Here, I present evidence that two classes of suppressors identified in this screen are bona fide regulators of the AIR-2 kinase. The strongest suppressor cdc-48.3, encodes an Afg2/Spaf-related Cdc48-like AAA+ ATPase that regulates AIR-2 kinase activity and stability during C. elegans embryogenesis. Loss of CDC-48.3 suppresses the lethality of air-2 mutant embryos, marked by the restoration of the dynamic behavior of AIR-2 and rescue of chromosome segregation and cytokinesis defects. Loss of CDC-48.3 leads to mitotic delays and abnormal accumulation of AIR-2 during late telophase/mitotic exit. In addition, AIR-2 kinase activity is significantly upregulated from metaphase through mitotic exit in CDC-48.3 depleted embryos. Inhibition of the AIR-2 kinase is dependent on (1) a direct physical interaction between CDC-48.3 and AIR-2, and (2) CDC-48.3 ATPase activity. Importantly, the increase in AIR-2 kinase activity does not correlate with the stabilization of AIR-2 in late mitosis. Hence, CDC-48.3 is a bi-functional inhibitor of AIR-2 that is likely to act via distinct mechanisms. The second class of suppressors consists of psy-2/smk-1 and pph-4.1, which encode two components of the conserved PP4 phosphatase complex that is essential for spindle assembly, chromosome segregation, and overall mitotic progression. AIR-2 and its substrates are likely to be targets of this complex since mitotic AIR-2 kinase activity is significantly increased during mitosis when either PSY-2/SMK-1 or PPH-4.l is depleted. Altogether, this study demonstrates that during the C. elegans embryonic cell cycle, regulators including the CDC-48.3 ATPase and PP4 phosphatase complex interact with and control the kinase activity, targeting behavior and protein stability of the Aurora B kinase to ensure accurate and timely progression of mitosis. ^

Inhibition of the anaphase-promoting complex by the Xnf7 ubiquitin ligase.

Degradation of specific protein substrates by the anaphase-promoting complex/cyclosome (APC) is critical for mitotic exit. We have identified the protein Xenopus nuclear factor 7 (Xnf7) as a novel APC inhibitor able to regulate the timing of exit from mitosis. Immunodepletion of Xnf7 from Xenopus laevis egg extracts accelerated the degradation of APC substrates cyclin B1, cyclin B2, and securin upon release from cytostatic factor arrest, whereas excess Xnf7 inhibited APC activity. Interestingly, Xnf7 exhibited intrinsic ubiquitin ligase activity, and this activity was required for APC inhibition. Unlike other reported APC inhibitors, Xnf7 did not associate with Cdc20, but rather bound directly to core subunits of the APC. Furthermore, Xnf7 was required for spindle assembly checkpoint function in egg extracts. These data suggest that Xnf7 is an APC inhibitor able to link spindle status to the APC through direct association with APC core components.

Bcl-xL regulation and function in cell cycle checkpoints and progression

Quelques évidences suggèrent que Bcl-xL, un membre anti-apoptotique de la famille Bcl-2, possède également des fonctions au niveau du cycle cellulaire et de ses points-contrôle. Pour étudier la régulation et fonction de Bcl-xL au cours du cycle cellulaire, nous avons généré et exprimé dans des cellules humaines une série de mutants de phosphorylation incluant Thr41Ala, Ser43Ala, Thr47Ala, Ser49Ala, Ser56Ala, Ser62Ala et Thr115Ala. L'analyse de cette série de mutants révèle que les cellules exprimant Bcl-xL(Ser62Ala) sont moins stables au point-contrôle G2 du cycle cellulaire comparées aux cellules exprimant le type sauvage ou les autres mutants de phosphorylation incluant Thr41Ala, Ser43Ala, Thr47Ala, Ser56Ala et Thr115Ala. Les études de cinétiques de phosphorylation et de localisation de phospho-Bcl-xL(Ser62) dans des cellules synchronisées et suite à l'activation du point-contrôle en G2 médié par l'étoposide (VP16), nous indiquent que phospho-Bcl-xL(Ser62) migre dans les corps nucléolaires durant l'arrêt en G2 dans les cellules exposées au VP16. Une série d'expériences incluant des essais kinase in vitro, l'utilisation d'inhibiteurs pharmacologiques et d'ARN interférant, nous révèlent que Polo kinase 1 (PLK1) et MAPK9/JNK2 sont les protéines kinase impliquées dans la phosphorylation de Bcl-xL(Ser62), et pour son accumulation dans les corps nucléolaires pendant le point-contrôle en G2. Nos résultats indiquent que durant le point-contrôle en G2, phospho-Bcl-xL(Ser62) se lie et se co-localise avec CDK1(CDC2), le complexe cycline-kinase qui contrôle l'entrée en mitose. Nos résultats suggèrent que dans les corps nucléolaires, phospho-Bcl-xL(Ser62) stabilise l'arrêt en G2 en séquestrant CDK1(CDC2) pour retarder l'entrée en mitose. Ces résultats soulignent également que les dommages à l'ADN influencent la composition des corps nucléolaires, structure nucléaire qui émerge maintenant comme une composante importante de la réponse aux dommages à l'ADN. Dans une deuxième étude, nous décrivons que les cellules exprimant le mutant de phosphorylation Bcl-xL(Ser62Ala) sont également plus stables au point-contrôle de l'assemblage du fuseau de la chromatine (SAC) suite à une exposition au taxol, comparées aux cellules exprimant le type sauvage ou d'autres mutants de phosphorylation de Bcl-xL, incluant Thr41Ala, Ser43Ala, Thr47Ala, Ser56Ala. Cet effet est indépendent de la fonction anti-apoptotique de Bcl-xL. Bcl-xL(Ser62) est fortement phosphorylé par PLK1 et MAPK14/SAPKp38α à la prométaphase, la métaphase et à la frontière de l'anaphase, et déphosphorylé à la télophase et la cytokinèse. Phospho-Bcl-xL(Ser62) se trouve dans les centrosomes avec γ-tubuline, le long du fuseau mitotique avec la protéine moteure dynéine et dans le cytosol mitotique avec des composantes du SAC. Dans des cellules exposées au taxol, phospho-Bcl-xL(Ser62) se lie au complexe inhibiteur CDC20/MAD2/BUBR1/BUB3, alors que le mutant Bcl-xL(Ser62Ala) ne se lie pas à ce complexe. Ces résultats indiquent que durant le SAC, la phosphorylation de Bcl-xL(Ser62) accélère la résolution du SAC et l'entrée des cellules en anaphase. Des expériences bloquant l'expression de Bcl-xL révèlent ègalement un taux très élevé de cellules tétraploïdes et binuclées après un traitement au nocodazole, consistant avec une fonction de Bcl-xL durant la mitose et dans la stabilité génomique. Dans la troisième étude, l'analyse fonctionnelle de cette série de mutants de phosphorylation indique également que les cellules exprimant Bcl-xL(Ser49Ala) sont moins stables durant le point-contrôle G2 et entre en cytokinèse plus lentement dans des cellules exposées aux inhibiteurs de la polymérisation/dépolymérisation des tubulines, composantes des microtubules. Ces effets de Bcl-xL(Ser49Ala) sont indépendents de sa fonction anti-apoptotique. La phosphorylation de Bcl-xL(Ser49) est dynamique au cours du cycle cellulaire. Dans des cellules synchronisées, Bcl-xL(Ser49) est phosphorylé en phase S et G2, déphosphorylé à la prométaphase, la métaphase et à la frontière de l'anaphase, et re-phosphorylé durant la télophase et la cytokinèse. Au cours du point-contrôle G2 induit par les dommages à l'ADN, un pool important de phospho-Bcl-xL(Ser49) se trouve aux centrosomes, un site important pour la régulation de l'entrée en mitose. Durant la télophase et la cytokinèse, phospho-Bcl-xL(Ser49) se trouve le long des microtubules avec la protéine moteure dynéine et dans le cytosol mitotique. Finalement, nos résultats suggèrent que PLK3 est responsable de la phosphorylation de Bcl-xL(Ser49), une protéine kinase impliquée pour l'entrée des cellules en mitose et pour la progression de la mitose jusqu'à la division cellulaire.

Identification de modifications post-traductionnelles de Staufen1 et étude de leur fonction régulatrice

La régulation post-transcriptionnelle joue un rôle de premier plan dans le contrôle fin de l’expression génique en permettant une modulation de la synthèse de protéines dans le temps et l’espace, en fonction des besoins de la cellule. Ainsi, des protéines reconnaissant des éléments d’ARN présents sur des transcrits peuvent influencer toutes les étapes de leur existence, soit leur épissage, leur export nucléaire, leur localisation subcellulaire, leur traduction et leur dégradation. Staufen1 (Stau1) est un membre de la famille des protéines liant l’ARN double-brin qui contribue à la régulation post-transcriptionnelle par son implication dans des mécanismes qui vont promouvoir l’épissage alternatif, le transport, la dé-répression de la traduction et l’induction de la dégradation d’ARN messagers (ARNm) spécifiques. L’identité des cibles potentielles de Stau1 est maintenant connue puisqu’une étude à l’échelle du génome a montré que la protéine s’associe à près de 7% du transcriptome des cellules HEK293T. Ces ARNm se classent dans un large éventail de catégories fonctionnelles, mais il est tout de même intéressant de noter qu’une grande proportion d’entre eux code pour des protéines reliées au métabolisme cellulaire et à la régulation de processus cellulaires. En considérant toutes ces informations, nous avons émis l’hypothèse que les différentes activités de Stau1 puissent être modulées afin de contrôler adéquatement l’expression des transcrits liés par la protéine. Dans la mesure où certains ARNm faisant partie des complexes définis par la présence de Stau1 codent pour des régulateurs clés de la prolifération cellulaire, nous avons voulu examiner si l’expression de la protéine varie au cours du cycle de division cellulaire. Nous avons montré que l’abondance de Stau1 est maximale en début de mitose et qu’elle diminue ensuite lorsque les cellules complètent la division cellulaire. Nous avons ensuite découvert que cette baisse d’expression de Stau1 en sortie de mitose dépend du complexe promoteur d’anaphase/cyclosome (APC/C). En soutien à l’idée que Stau1 soit une cible de cette ubiquitine ligase de type E3, nous avons de plus démontré que Stau1 est ubiquitiné et dégradé par le protéasome. Ce contrôle des niveaux de Stau1 semble important puisque la surexpression de la protéine retarde la sortie de mitose et entraîne une diminution importante de la prolifération cellulaire. Par ailleurs, nous avons supposé que les différentes fonctions de Stau1 puissent également être sujettes à une régulation. Compte tenu que les activités de nombreuses protéines liant l’ARN peuvent être contrôlées par des modifications post-traductionnelles telles que la phosphorylation, nous avons voulu tester la possibilité que Stau1 soit phosphorylé. L’immunopurification de Stau1 et son analyse par spectrométrie de masse nous a permis d’identifier trois phosphosites dans la protéine. L’évaluation du rôle de ces événements de phosphorylation à l’aide de mutants phoshomimétiques ou non-phoshorylables a révélé que la modification de Stau1 pourrait compromettre son association à la protéine UPF1. Comme cette interaction est nécessaire pour déstabiliser les transcrits liés par Stau1, nos résultats suggèrent fortement que la fonction de Stau1 dans la dégradation d’ARNm est régulée négativement par sa phosphorylation. Toutes ces données mettent en lumière l’importance des modifications post-traductionnelles telles que l’ubiquitination et la phosphorylation dans la modulation de l’expression et des fonctions de Stau 1. Somme toute, il est vraisemblable que ces mécanismes de contrôle puissent avoir un impact significatif sur le destin des ARNm liés par Stau1, particulièrement dans un contexte de progression dans le cycle cellulaire.

Regulation of the Anaphase-promoting Complex/Cyclosome by bimAAPC3 and Proteolysis of NIMA

Surprisingly, although highly temperature-sensitive, the bimA1APC3 anaphase-promoting complex/cyclosome (APC/C) mutation does not cause arrest of mitotic exit. Instead, rapid inactivation of bimA1APC3 is shown to promote repeating oscillations of chromosome condensation and decondensation, activation and inactivation of NIMA and p34cdc2 kinases, and accumulation and degradation of NIMA, which all coordinately cycle multiple times without causing nuclear division. These bimA1APC3-induced cell cycle oscillations require active NIMA, because a nimA5 + bimA1APC3 double mutant arrests in a mitotic state with very high p34cdc2 H1 kinase activity. NIMA protein instability during S phase and G2 was also found to be controlled by the APC/C. The bimA1APC3 mutation therefore first inactivates the APC/C but then allows its activation in a cyclic manner; these cycles depend on NIMA. We hypothesize that bimAAPC3 could be part of a cell cycle clock mechanism that is reset after inactivation of bimA1APC3. The bimA1APC3 mutation may also make the APC/C resistant to activation by mitotic substrates of the APC/C, such as cyclin B, Polo, and NIMA, causing mitotic delay. Once these regulators accumulate, they activate the APC/C, and cells exit from mitosis, which then allows this cycle to repeat. The data indicate that bimAAPC3 regulates the APC/C in a NIMA-dependent manner.

Protein kinase Cdc15 activates the Dbf2-Mob1 kinase complex

Exit from mitosis in budding yeast requires inactivation of cyclin-dependent kinases through mechanisms triggered by the protein phosphatase Cdc14. Cdc14 activity, in turn, is regulated by a group of proteins, the mitotic exit network (MEN), which includes Lte1, Tem1, Cdc5, Cdc15, Dbf2/Dbf20, and Mob1. The direct biochemical interactions between the components of the MEN remain largely unresolved. Here, we investigate the mechanisms that underlie activation of the protein kinase Dbf2. Dbf2 kinase activity depended on Tem1, Cdc15, and Mob1 in vivo. In vitro, recombinant protein kinase Cdc15 activated recombinant Dbf2, but only when Dbf2 was bound to Mob1. Conserved phosphorylation sites Ser-374 and Thr-544 (present in the human, Caenorhabditis elegans, and Drosophila melanogaster relatives of Dbf2) were required for DBF2 function in vivo, and activation of Dbf2-Mob1 by Cdc15 in vitro. Although Cdc15 phosphorylated Dbf2, Dbf2–Mob1, and Dbf2(S374A/T544A)–Mob1, the pattern of phosphate incorporation into Dbf2 was substantially altered by either the S374A T544A mutations or omission of Mob1. Thus, Cdc15 promotes the exit from mitosis by directly switching on the kinase activity of Dbf2. We propose that Mob1 promotes this activation process by enabling Cdc15 to phosphorylate the critical Ser-374 and Thr-544 phosphoacceptor sites of Dbf2.

Cdk Activity Couples Epigenetic Centromere Inheritance to Cell Cycle Progression

Centromeres form the site of chromosome attachment to microtubules during mitosis. Identity of these loci is maintained epigenetically by nucleosomes containing the histone H3 variant CENP-A. Propagation of CENP-A chromatin is uncoupled from DNA replication initiating only during mitotic exit. We now demonstrate that inhibition of Cdk1 and Cdk2 activities is sufficient to trigger CENP-A assembly throughout the cell cycle in a manner dependent on the canonical CENP-A assembly machinery. We further show that the key CENP-A assembly factor Mis18BP1(HsKNL2) is phosphorylated in a cell cycle-dependent manner that controls its centromere localization during mitotic exit. These results strongly support a model in which the CENP-A assembly machinery is poised for activation throughout the cell cycle but kept in an inactive noncentromeric state by Cdk activity during S, G2, and M phases. Alleviation of this inhibition in G1 phase ensures tight coupling between DNA replication, cell division, and subsequent centromere maturation.

Premature Sister Chromatid Separation Is Poorly Detected by the Spindle Assembly Checkpoint as a Result of System-Level Feedback

Sister chromatid cohesion, mediated by the cohesin complex, is essential for faithful mitosis. Nevertheless, evidence suggests that the surveillance mechanism that governs mitotic fidelity, the spindle assembly checkpoint (SAC), is not robust enough to halt cell division when cohesion loss occurs prematurely. The mechanism behind this poor response is not properly understood. Using developing Drosophila brains, we show that full sister chromatid separation elicits a weak checkpoint response resulting in abnormal mitotic exit after a short delay. Quantitative live-cell imaging approaches combined with mathematical modeling indicate that weak SAC activation upon cohesion loss is caused by weak signal generation. This is further attenuated by several feedback loops in the mitotic signaling network. We propose that multiple feedback loops involving cyclin-dependent kinase 1 (Cdk1) gradually impair error-correction efficiency and accelerate mitotic exit upon premature loss of cohesion. Our findings explain how cohesion defects may escape SAC surveillance.

Cdk1/Erk2- and Plk1-dependent phosphorylation of a centrosome protein, Cep55, is required for its recruitment to midbody and cytokinesis

Centrosomes in mammalian cells have recently been implicated in cytokinesis; however, their role in this process is poorly defined. Here, we describe a human coiled-coil protein, Cep55 (centrosome protein 55 kDa), that localizes to the mother centriole during interphase. Despite its association with gamma-TuRC anchoring proteins CG-NAP and Kendrin, Cep55 is not required for microtubule nucleation. Upon mitotic entry, centrosome dissociation of Cep55 is triggered by Erk2/Cdk1-dependent phosphorylation at S425 and S428. Furthermore, Cep55 locates to the midbody and plays a role in cytokinesis, as its depletion by siRNA results in failure of this process. S425/428 phosphorylation is required for interaction with Plk1, enabling phosphorylation of Cep55 at S436. Cells expressing phosphorylation-deficient mutant forms of Cep55 undergo cytokinesis failure. These results highlight the centrosome as a site to organize phosphorylation of Cep55, enabling it to relocate to the midbody to function in mitotic exit and cytokinesis.

Checkpoint mitótico como alvo terapêutico para sensibilizar células cancerígenas a agentes antimitóticos

Dissertação de Mestrado, Oncobiologia – Mecanismos Moleculares do Cancro, Departamento de Ciências Biomédicas e Medicina, Universidade do Algarve, 2015

Création de mutants cdc5 en vue de l’identification des substrats de PLK/Cdc5 lors de la réponse d’adaptation aux dommages à l’ADN.

Les kinases de la famille Polo (PLK) jouent un rôle majeur durant le cycle cellulaire, notamment en promouvant des processus essentiels tels que l’entrée en phase M et la sortie du cycle cellulaire. Elles sont également impliquées dans plusieurs cancers et ont un fort pouvoir tumorigène. Notre laboratoire a récemment montré que Cdc5 (la kinase PLK chez Saccharomyces cerevisiae) est également nécessaire pour l'adaptation aux dommages à l'ADN, et que la cible critique de Cdc5 au cours de ce processus pourrait être une cible peu conventionnelle localisée aux centrosomes de levures. Dans le but d’identifier ce substrat, une analyse intégrale du phosphoprotéome de PLK/Cdc5 par spectrométrie de masse devra être réalisée. Pour ce faire, un allèle CDC5 sensible à la température, c’est-à-dire une version mutante qui devient inactive à température élevée, devra être utilisée. Cet allèle devra être thermosensible à 30°C, afin de s’assurer qu’il sera le seul à être inactivé à cette température et que, par conséquent, seuls les substrats de Cdc5 seront identifiés. À cet effet, nous avons généré deux allèles cdc5 thermosensibles à 30°C : cdc5-17 et cdc5-18, puis analysé leur cycle cellulaire à 32°C. Les résultats de cette analyse ont montré que l’exposition des cellules à 32°C résulte en leur blocage en fin de mitose sous la forme bourgeonnée, témoignant d’un défaut dans la promotion de la sortie de la mitose. Ce défaut est causé par la mutation du gène CDC5 dont la protéine favorise la sortie de la mitose via deux voies : la voie du MEN (Mitotic Exit Network) et la voie du FEAR (Cdc Fourteen Early Anaphase Release). cdc5-17 et cdc5-18 représentent des outils biologiques précieux qui permettront de mieux analyser le phosphoprotéome de PLK/Cdc5 et de mener à l’identification des cibles de Cdc5 lors de la réponse d’adaptation aux dommages à l’ADN. Étant donné que l’adaptation aux dommages à l’ADN causés par des chimiothérapies représente l’un des facteurs permettant la prolifération des tumeurs cancéreuses, cette découverte serait un grand pas dans la lutte contre le cancer.

Création de mutants cdc5 en vue de l’identification des substrats de PLK/Cdc5 lors de la réponse d’adaptation aux dommages à l’ADN

Les kinases de la famille Polo (PLK) jouent un rôle majeur durant le cycle cellulaire, notamment en promouvant des processus essentiels tels que l’entrée en phase M et la sortie du cycle cellulaire. Elles sont également impliquées dans plusieurs cancers et ont un fort pouvoir tumorigène. Notre laboratoire a récemment montré que Cdc5 (la kinase PLK chez Saccharomyces cerevisiae) est également nécessaire pour l'adaptation aux dommages à l'ADN, et que la cible critique de Cdc5 au cours de ce processus pourrait être une cible peu conventionnelle localisée aux centrosomes de levures. Dans le but d’identifier ce substrat, une analyse intégrale du phosphoprotéome de PLK/Cdc5 par spectrométrie de masse devra être réalisée. Pour ce faire, un allèle CDC5 sensible à la température, c’est-à-dire une version mutante qui devient inactive à température élevée, devra être utilisée. Cet allèle devra être thermosensible à 30°C, afin de s’assurer qu’il sera le seul à être inactivé à cette température et que, par conséquent, seuls les substrats de Cdc5 seront identifiés. À cet effet, nous avons généré deux allèles cdc5 thermosensibles à 30°C : cdc5-17 et cdc5-18, puis analysé leur cycle cellulaire à 32°C. Les résultats de cette analyse ont montré que l’exposition des cellules à 32°C résulte en leur blocage en fin de mitose sous la forme bourgeonnée, témoignant d’un défaut dans la promotion de la sortie de la mitose. Ce défaut est causé par la mutation du gène CDC5 dont la protéine favorise la sortie de la mitose via deux voies : la voie du MEN (Mitotic Exit Network) et la voie du FEAR (Cdc Fourteen Early Anaphase Release). cdc5-17 et cdc5-18 représentent des outils biologiques précieux qui permettront de mieux analyser le phosphoprotéome de PLK/Cdc5 et de mener à l’identification des cibles de Cdc5 lors de la réponse d’adaptation aux dommages à l’ADN. Étant donné que l’adaptation aux dommages à l’ADN causés par des chimiothérapies représente l’un des facteurs permettant la prolifération des tumeurs cancéreuses, cette découverte serait un grand pas dans la lutte contre le cancer.

Regulation of the Cyclin B Degradation System by an Inhibitor of Mitotic Proteolysis

The initiation of anaphase and exit from mitosis depend on the anaphase-promoting complex (APC), which mediates the ubiquitin-dependent proteolysis of anaphase-inhibiting proteins and mitotic cyclins. We have analyzed whether protein phosphatases are required for mitotic APC activation. In Xenopus egg extracts APC activation occurs normally in the presence of protein phosphatase 1 inhibitors, suggesting that the anaphase defects caused by protein phosphatase 1 mutation in several organisms are not due to a failure to activate the APC. Contrary to this, the initiation of mitotic cyclin B proteolysis is prevented by inhibitors of protein phosphatase 2A such as okadaic acid. Okadaic acid induces an activity that inhibits cyclin B ubiquitination. We refer to this activity as inhibitor of mitotic proteolysis because it also prevents the degradation of other APC substrates. A similar activity exists in extracts of Xenopus eggs that are arrested at the second meiotic metaphase by the cytostatic factor activity of the protein kinase mos. In Xenopus eggs, the initiation of anaphase II may therefore be prevented by an inhibitor of APC-dependent ubiquitination.