985 resultados para Hepatic Enzymes


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Le papier bioactif est obtenu par la modification de substrat du papier avec des biomolécules et des réactifs. Ce type de papier est utilisé dans le développement de nouveaux biocapteurs qui sont portables, jetables et économiques visant à capturer, détecter et dans certains cas, désactiver les agents pathogènes. Généralement les papiers bioactifs sont fabriqués par l’incorporation de biomolécules telles que les enzymes et les anticorps sur la surface du papier. L’immobilisation de ces biomolécules sur les surfaces solides est largement utilisée pour différentes applications de diagnostic comme dans immunocapteurs et immunoessais mais en raison de la nature sensible des enzymes, leur intégration au papier à grande échelle a rencontré plusieurs difficultés surtout dans les conditions industrielles. Pendant ce temps, les microcapsules sont une plate-forme intéressante pour l’immobilisation des enzymes et aussi assez efficace pour permettre à la fonctionnalisation du papier à grande échelle car le papier peut être facilement recouvert avec une couche de telles microcapsules. Dans cette étude, nous avons développé une plate-forme générique utilisant des microcapsules à base d’alginate qui peuvent être appliquées aux procédés usuels de production de papier bioactif et antibactérien avec la capacité de capturer des pathogènes à sa surface et de les désactiver grâce à la production d’un réactif anti-pathogène. La conception de cette plate-forme antibactérienne est basée sur la production constante de peroxyde d’hydrogène en tant qu’agent antibactérien à l’intérieur des microcapsules d’alginate. Cette production de peroxyde d’hydrogène est obtenue par oxydation du glucose catalysée par la glucose oxydase encapsulée à l’intérieur des billes d’alginate. Les différentes étapes de cette étude comprennent le piégeage de la glucose oxydase à l’intérieur des microcapsules d’alginate, l’activation et le renforcement de la surface des microcapsules par ajout d’une couche supplémentaire de chitosan, la vérification de la possibilité d’immobilisation des anticorps (immunoglobulines G humaine comme une modèle d’anticorps) sur la surface des microcapsules et enfin, l’évaluation des propriétés antibactériennes de cette plate-forme vis-à-vis l’Escherichia coli K-12 (E. coli K-12) en tant qu’un représentant des agents pathogènes. Après avoir effectué chaque étape, certaines mesures et observations ont été faites en utilisant diverses méthodes et techniques analytiques telles que la méthode de Bradford pour dosage des protéines, l’électroanalyse d’oxygène, la microscopie optique et confocale à balayage laser (CLSM), la spectrométrie de masse avec désorption laser assistée par matrice- temps de vol (MALDI-TOF-MS), etc. Les essais appropriés ont été effectués pour valider la réussite de modification des microcapsules et pour confirmer à ce fait que la glucose oxydase est toujours active après chaque étape de modification. L’activité enzymatique spécifique de la glucose oxydase après l’encapsulation a été évaluée à 120±30 U/g. Aussi, des efforts ont été faits pour immobiliser la glucose oxydase sur des nanoparticules d’or avec deux tailles différentes de diamètre (10,9 nm et 50 nm) afin d’améliorer l’activité enzymatique et augmenter l’efficacité d’encapsulation. Les résultats obtenus lors de cette étude démontrent les modifications réussies sur les microcapsules d’alginate et aussi une réponse favorable de cette plate-forme antibactérienne concernant la désactivation de E. coli K-12. La concentration efficace de l’activité enzymatique afin de désactivation de cet agent pathogénique modèle a été déterminée à 1.3×10-2 U/ml pour une concentration de 6.7×108 cellules/ml de bactéries. D’autres études sont nécessaires pour évaluer l’efficacité de l’anticorps immobilisé dans la désactivation des agents pathogènes et également intégrer la plate-forme sur le papier et valider l’efficacité du système une fois qu’il est déposé sur papier.

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Our objective was to determine the coordination of transcript and/or protein abundances of stromal enzymes during leaf senescence. First trifolioliate leaves of Phaseolus vulgaris L. plants were sampled beginning at the time of full leaf expansion; at this same time, half of the plants were switched to a nutrient solution lacking N. Total RNA and soluble protein abundances decreased after full leaf expansion whereas chlorophyll abundance remained constant; N stress enhanced the decline in these traits. Abundances of ribulose-1,5-bisposphate carboxylase/oxygenase (Rubisco; EC 4.1.1.39), Rubisco activase and phosphoribulokinase (Ru5P kinase; EC 2.7.1.19) decreased after full leaf expansion in a coordinated manner for both treatments. In contrast, adenosine diphosphate glucose (ADPGlc) pyrophosphorylase (EC 2.7.7.27) abundance was relatively constant during natural senescence but did decline similar to the other enzymes under N stress. Northern analyses indicated that transcript abundances for all enzymes declined markedly on a fresh-weight basis just after full leaf expansion. This rapid decline was particularly strong for the Rubisco small subunit (rbcS) transcript. The decline was enhanced by N stress for rbcS and Rubisco activase (rca), but not for Ru5P kinase (prk) and ADPGlc pyrophosphorylase (agp). Transcripts of the Clp protease subunits clpC and clpP declined in abundance just after full leaf expansion, similar to the other mRNA species. When Northern blots were analyzed using equal RNA loads, rbcS transcripts still declined markedly just after full leaf expansion whereas rca and clpC transcripts increased over time. The results indicated that senescence was initiated near the time of full leaf expansion, was accelerated by N stress, and was characterized by large decline in transcripts of stromal enzymes. The decreased mRNA abundances were in general associated with steadily declining stromal protein abundances, with ADPGlc pyrophosphorylase being the notable exception. Transcript analyses for the Clp subunits supported a recent report (Shanklin et al., 1995, Plant Cell 7: 1713--1722) indicating that the Clp protease subunits were constitutive throughout development and suggested that ClpC and ClpP do not function as a senescence-specific proteolytic system in Phaseolus.

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Le papier bioactif est obtenu par la modification de substrat du papier avec des biomolécules et des réactifs. Ce type de papier est utilisé dans le développement de nouveaux biocapteurs qui sont portables, jetables et économiques visant à capturer, détecter et dans certains cas, désactiver les agents pathogènes. Généralement les papiers bioactifs sont fabriqués par l’incorporation de biomolécules telles que les enzymes et les anticorps sur la surface du papier. L’immobilisation de ces biomolécules sur les surfaces solides est largement utilisée pour différentes applications de diagnostic comme dans immunocapteurs et immunoessais mais en raison de la nature sensible des enzymes, leur intégration au papier à grande échelle a rencontré plusieurs difficultés surtout dans les conditions industrielles. Pendant ce temps, les microcapsules sont une plate-forme intéressante pour l’immobilisation des enzymes et aussi assez efficace pour permettre à la fonctionnalisation du papier à grande échelle car le papier peut être facilement recouvert avec une couche de telles microcapsules. Dans cette étude, nous avons développé une plate-forme générique utilisant des microcapsules à base d’alginate qui peuvent être appliquées aux procédés usuels de production de papier bioactif et antibactérien avec la capacité de capturer des pathogènes à sa surface et de les désactiver grâce à la production d’un réactif anti-pathogène. La conception de cette plate-forme antibactérienne est basée sur la production constante de peroxyde d’hydrogène en tant qu’agent antibactérien à l’intérieur des microcapsules d’alginate. Cette production de peroxyde d’hydrogène est obtenue par oxydation du glucose catalysée par la glucose oxydase encapsulée à l’intérieur des billes d’alginate. Les différentes étapes de cette étude comprennent le piégeage de la glucose oxydase à l’intérieur des microcapsules d’alginate, l’activation et le renforcement de la surface des microcapsules par ajout d’une couche supplémentaire de chitosan, la vérification de la possibilité d’immobilisation des anticorps (immunoglobulines G humaine comme une modèle d’anticorps) sur la surface des microcapsules et enfin, l’évaluation des propriétés antibactériennes de cette plate-forme vis-à-vis l’Escherichia coli K-12 (E. coli K-12) en tant qu’un représentant des agents pathogènes. Après avoir effectué chaque étape, certaines mesures et observations ont été faites en utilisant diverses méthodes et techniques analytiques telles que la méthode de Bradford pour dosage des protéines, l’électroanalyse d’oxygène, la microscopie optique et confocale à balayage laser (CLSM), la spectrométrie de masse avec désorption laser assistée par matrice- temps de vol (MALDI-TOF-MS), etc. Les essais appropriés ont été effectués pour valider la réussite de modification des microcapsules et pour confirmer à ce fait que la glucose oxydase est toujours active après chaque étape de modification. L’activité enzymatique spécifique de la glucose oxydase après l’encapsulation a été évaluée à 120±30 U/g. Aussi, des efforts ont été faits pour immobiliser la glucose oxydase sur des nanoparticules d’or avec deux tailles différentes de diamètre (10,9 nm et 50 nm) afin d’améliorer l’activité enzymatique et augmenter l’efficacité d’encapsulation. Les résultats obtenus lors de cette étude démontrent les modifications réussies sur les microcapsules d’alginate et aussi une réponse favorable de cette plate-forme antibactérienne concernant la désactivation de E. coli K-12. La concentration efficace de l’activité enzymatique afin de désactivation de cet agent pathogénique modèle a été déterminée à 1.3×10-2 U/ml pour une concentration de 6.7×108 cellules/ml de bactéries. D’autres études sont nécessaires pour évaluer l’efficacité de l’anticorps immobilisé dans la désactivation des agents pathogènes et également intégrer la plate-forme sur le papier et valider l’efficacité du système une fois qu’il est déposé sur papier.

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The present study investigates the concentrations and patterns of organochlorine pesticides (OCPs) and their metabolites in liver and plasma of two ringed seal populations (Phoca hispida): lower contaminated Svalbard population and more contaminated Baltic Sea population. Among OCPs, p,p'-DDE and sum-chlordanes were the highest in concentration. With increasing hepatic contaminant concentrations and activities of xenobiotic-metabolizing enzymes, the concentrations of 3-methylsulfonyl-p,p'-DDE and the concentration ratios of pentachlorophenol/hexachlorobenzene increased, and the toxaphene pattern shifted more towards persistent Parlar-26 and -50 and less towards more biodegradable Parlar-44. Relative concentrations of the chlordane metabolites, oxychlordane and -heptachlorepoxide, to sum-chlordanes were higher in the seals from Svalbard compared to the seals from the Baltic, while the trend was opposite for cis- and trans-nonachlor. The observed differences in the OCP patterns in the seals from the two populations are probably related to the catalytic activity of xenobiotic-metabolizing enzymes, and also to differences in dietary exposure.

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Prepared for the ICRDB Program by the Current Cancer Research Project Analyis Center.