196 resultados para Livros de Notas dos Tabeliães


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A new species of Xylocopa Latreille, 1802, and notes on Xylocopa transitoria Pérez and X. mordax Smith (Hymenoptera, Apoidea). Xylocopa (Neoxylocopa) orthogonaspis sp. nov. (Brazil, Amazonas) is described. It is a remarkable species from the Amazonian Region easily recognized by the strong and sharp right angle between upper and posterior portions of the scutellum; the wings are slightly brown with a brassy hue and a little vinaceous apex. Some notes to separate Xylocopa (N.) orthogonaspis sp. nov. from X. (N.) transitoria Pérez, 1901, and X. (N.) mordax Smith, 1874, are given. Xylocopa (N.) submordax Cockerell, 1935, on the other hand, is considered as a new synonym of X. (N.) transitoria Pérez, 1901.

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Notes, descriptions, synonymies and reinstatement in Hesperandra Arigony, 1977 (Coleoptera, Cerambycidae, Parandrinae). The genus Hesperandra Arigony, 1977, is divided in three subgenera: Hesperandra s. str., Zikandra subgen. nov. and Tavandra subgen. nov. Keys to the subgenera and species are added. H. glaberrima (Zikán, 1948) is revalidated and redescribed. H. humboldti sp. nov., from Colombia and Ecuador is described. New synonymies established: Hesperandra galapagoensis (Van Dyke, 1953) = H. brevicollis (Lameere, 1902); H. scrobriculata (Zikán, 1948) = Acutandra murrayi (Lameere, 1912). The lectotype of Parandra brevicollis Lameere, 1902 is designated.

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The genus Physopleurus Lacordaire, 1869 = Basitoxus (Parabasitoxus) Fragoso & Monné, 1995 syn. nov. is revised and redefined based on new characters. The following species are treated (in sequence that appear in the presented key): Physopleurus exiguus sp. nov. (Bolivia and Brazil), P. crassidens (Bates, 1869), P. longiscapus Lameere, 1912, P. rugosus (Gahan, 1894), P. tritomicros Lameere, 1912, P. seripierriae sp. nov. (Brazil, Mato Grosso), P. dohrnii Lacordaire, 1869, P. villardi (Lameere, 1902) = Aplagiognathus guatemalensis Casey, 1912 syn. nov., P. amazonicus (Fragoso & Monné, 1995) comb. nov., and. P. maillei (Audinet-Serville, 1832) comb. nov. The latter two species formerly in Basitoxus (Parabasitoxus) Fragoso & Monné, 1995. Illustrations of Basitoxus megacephalus (Germar, 1824) are included to allow comparisons with Physopleurus species. Key to species of Physopleurus is added.

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Twenty-two nests of Trypoxylon asuncicola were sampled in Viçosa, State of Minas Gerais, Brazil, in January 2000 and the occupants' behavior of three nests was registered in 2h of direct observation. 528 brood cells were excavated (24±13.84 SD cells per nest), 129 were reused cells, some of them for seven times (meconium deposit count). The mean number of total cells, mean number of open and closed cells, parasitism rate and mean number of reused cells per nest were similar between old and new nests. Parasitism rate and cell reuse were associated with the number of building cells in the nest, but nest aggregate in the sampled area may play some role in the parasitism rate. Brachymeria sp. (Chalcididae) was the most important agent of brood mortality (80%). Other parasites were Melittobia sp. (Eulophidae) (17%) and a species of Icheumonidae (3%). The number of closed cells with immature individuals per nest was 4±4.2SD (N=17) and the mean reproductivity per female was 3±2.4SD (N=5). New nests produced more offspring (0 a 35%) than old nests (0 to 11%). Females and males can be found resting in the nest but copula or guarding behavior by the male was not observed. There is some evidence that in the sampled area the switch of nests by females is great and agonistic behavior between a nest owner and a visitor was not evident. Females were larger (3.9±0.4SD mm) than males (3.1±0.3SD mm) (measured as forewing length). The secondary sex ratio was 1.26 (±0.07 SE) in favor of females, which was not different from 1:1 ratio. The majority (97%) of the sampled larvae of T. asuncicola showed diapause. Some (5.1%) 'anomalous cells' were found.

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The following new species are described in the subgenus Bisaltes (Bisaltes): B. (B.) picticornis sp. nov. from Bolivia; B.(B.) taua sp. nov. from Brazil (Paraná and Santa Catarina) and B. (B.) unicolor sp. nov. from Ecuador. Bisaltes (B.) pictus Breuning, 1940 is transferred to the subgenus Craspedocerus. In Ptericoptus, P. hybridus hybridus Breuning, 1939 is considered a synonym of P. acuminatus (Fabricius, 1801); P. dorsalis Audinet-Serville, 1835 previously in the synonymy of P. acuminatus is revalidated and Saperda vitta Newman, 1838 is considered its synonym; P. corumbaensis sp. nov. is described from Brazil (Mato Grosso do Sul).

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Hephialtes mourei sp. nov. é descrita do Brasil (Minas Gerais, Rio de Janeiro, São Paulo e Paraná). A chave para espécies de Braderochus e a ilustração do holótipo de B. mundus (White, 1853) fornecidas por Bleuzen (1994) são discutidas.

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São descritas quatro espécies novas de Dianthidiini do Peru: Duckeanthidium tarapotoense sp. nov. e Grafanthidium yurimaguasano sp. nov. de Tarapoto, Yurimaguas; Anthodioctes sanmartinensis sp. nov. e Anthodioctes shilcayensis sp. nov. de Tarapoto, Boca Toma. O macho de Anthodioctes indescriptus (Dalla Torre, 1890) é descrito pela primeira vez e são dadas novas ocorrências de Bothranthidium lauroi Moure, 1947, no Peru.

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O nome limao tem sido usado para espécies distintas do gênero Lestrimelitta. O material-tipo de Smith depositado no The Natural History Museum (Londres) foi examinado. A operária de L. limao é descrita e o lectótipo para Trigona limao Smith, 1863 é designado. Esta espécie encontra-se restrita aos cerrados da porção central do Brasil, de São Paulo ao Maranhão. Distingue-se de outras espécies pelos seguintes caracteres diagnósticos: vértice com pouquíssimas cerdas eretas, muito finas e curtas, restritas à região interocelar; bordo anterior do mesoscuto com cerdas eretas castanhas nas laterais; laterais do mesepisterno com cerdas eretas esparsas e restritas à porção ventral e curvatura entre porções lateral e ventral, tornando-se mais longas próximo à base da coxa média; contorno da abertura do espiráculo propodeal, aproximadamente 2,5 x mais longo do que largo; flancos do propódeo coberto por pilosidade decumbente esbranquiçada, fina e ramificada; esporão mesotibial muito reduzido; tergo metassomal 1 com cerdas enegrecidas nas porções laterais.

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Novas sinonímias propostas: Strangalia flavocincta (Thomson, 1860) = Ophistomis tristis Melzer, 1922 syn. nov. = O. latifasciata Melzer, 1926 syn. nov.; Strangalia succincta (Redtenbacher, 1867) = O. auriflua Redtenbacher, 1867 syn. nov.; Strangalia melanura (Redtenbacher, 1867) = Euryptera dimidiata Redtenbacher, 1867 syn. nov.; Strangalia lyrata (Redtenbacher, 1867) = Ophistomis discophora Redtenbacher, 1867 syn. nov.; Strangalia fulvicornis (Bates, 1872) = Ophistomis variabilis Melzer, 1926 syn. nov. = O. flavovittata Melzer, 1926 syn. nov.; Strangalia melanophthisis (Berg, 1889) reval. = Euryptera melanura var. nigripennis Melzer, 1930 syn. nov.; Anastrangalia sanguinolenta (Linnaeus, 1761) (espécie introduzida na Argentina) = Leptura bonaeriensis Burmeister, 1865 syn. nov.

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Novas sinonímias propostas: X. neglectum (Gounelle, 1911) = Callichroma (Xystochroma) equestriforme Schmidt, 1924 syn. nov.; X. gracilipes (Bates, 1879) = Callichroma (Xystochroma) planipenne Schmidt, 1924 syn. nov. = Callichroma (Xystochroma) cuprisuturatum Zajciw, 1965 syn. nov. Novas espécies descritas do Brasil: X. femoratum sp. nov. (Minas Gerais e Rio Grande do Sul); X. echinatum sp. nov. (Rio de Janeiro e São Paulo); da Venezuela: X. incomptum sp. nov. (Amazonas). Chave para identificação das espécies de Xystochroma é fornecida.

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São descritas e ilustradas dez espécies novas de Rhabdepyris Kieffer, 1904: Rhabdepyris (Chlorepyris) atlanticus sp. nov., R. (C.) circinnatus sp. nov., R. (C.) clavatus sp. nov., R. (C.) ocultatus sp. nov., R. (C.) subangulatus sp. nov., R. (C.) sulcatus sp. nov., R. (C.) unifoveatus sp. nov., R. (R.) areolatus sp. nov., R. (Trichotepyris) curvicarinatus sp. nov., R. (T.) foveaticeps sp. nov.. É proposta uma chave para identificação para as espécies de Rhabdepyris da Mata Atlântica, e são apresentadas notas taxonômicas de R. (C.) longifoveatus Azevedo, 1999, R. (C.) septemlineatus Kieffer, 1906, R. (C.) vesculus Evans, 1965, R. (C.) virescens Evans, R. (T.) cupreolus Evans, 1965, R. (T) hirticulus Evans, 1965 e R. (T.) plaumanni Evans, 1965. Todas as espécies tiveram sua distribuição geográfica conhecida ampliada. A fauna de Rhabdepyris para a Mata Atlântica passa a ser representada por 25 espécies.

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Foram estudadas as espécies de Apenesia Westwood, coletadas em 29 localidades ao longo de um gradiente latitudinal na Mata Atlântica. Foram descritas e ilustradas as sete espécies novas seguintes: Apenesia pectinata sp. nov., A. atlantica sp. nov., A. perlonga sp. nov., A. exigua sp. nov., A. patens sp. nov., A. simplex sp. nov., A. hepatica sp. nov.. Foi descoberta e descrita a fêmea de Apenesia elongata Evans, 1963. Foram adicionados registros novos de distribuição geográfica de quatorze espécies previamente descritas: A. apicilata Azevedo & Batista, A. aurita Waichert & Azevedo, A. clypeata Leal & Azevedo, A. concavata Corrêa & Azevedo, A. crenutala (Kieffer), A. distincta Corrêa & Azevedo, A. elongata Evans, A. inca Evans, A. neotropica (Kieffer), A. photophila (Ogloblin), A. quadrata Evans, A. spinipes Evans, A. stricta Corrêa & Azevedo e A. transversa Evans. Apenesia é registrada pela primeira vez para os estados de Paraíba, Pernambuco, Alagoas, Sergipe e Bahia.

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Três ninhos de T. extranea, encontrados nas matas de igapó, na localidade de Samaúma, foz do rio Daraã (64°45'35" W, 0°27'7" S), AM, Brasil, são descritos e ilustrados. Este é o único lugar onde esta espécie é conhecida. Todos os ninhos estavam em ocos de ramos secos de "Tanimbuca" - Buchenavia suaveolens Eichler (Combretaceae). Dois deles compartilhavam o oco com ninhos de Frieseomelitta sp. e um era solitário. Um ninho continha 46 células de cria, 43 operárias adultas e uma rainha fisogástrica; o segundo, 240 células, 117 operárias, 25 machos e uma rainha fisogástrica; o terceiro, 260 células, 163 operárias, uma rainha fisogástrica e uma pupa de rainha. As células são construídas na forma de cacho, como em Friseomelitta, e as células de rainha são do mesmo tamanho e forma que as de operária. Não há potes de alimento - este é o único Meliponini que se conhece que não armazena alimento. Supostamente, esta espécie tem hábitos cleptobióticos. Rainhas e machos são também descritos.

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São descritas e ilustradas as seguintes espécies: Nananthidium fasciatum sp. nov., N. flavoalveolatum sp. nov. e N. peruvianum sp. nov. do Peru e, N. schlindweini sp. nov. do Brasil. São dadas notas sobre as variações do colorido do tegumento de N. bettyae Moure, 1947 e N. quadrimaculatum (Cockerell, 1927). É apresentada uma chave para a identificação das fêmeas das espécies sul-americanas.

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Com o objetivo de descrever a composição, ocorrência temporal e aspectos ecológicos das espécies de larvas de Lepidoptera associadas a cinco espécies de plantas: Erythroxylum ovalifolium e E. subsessile (Erythroxylaceae), Manilkara subsericea (Sapotaceae), Protium icicariba e P. heptaphyllum (Burseraceae), 1.455 plantas foram vistoriadas durante o período de Julho de 2003 a Agosto de 2005 no Parque Nacional da Restinga de Jurubatiba (PNRJ). Foram encontradas 32 espécies de Lepidoptera associadas a essas cinco espécies de plantas hospedeiras, sendo que as quatro espécies mais abundantes pertenciam à família Elachistidae. Manilkara subsericea apresentou o maior número de espécies de Lepidoptera associadas, 14 espécies, seguida por E. ovalifolium, com 10 espécies, P. icicariba, com sete, E. subsessile com seis e P. heptaphyllum com duas espécies de Lepidoptera associadas. Apenas uma das 32 espécies de Lepidoptera criadas apresentava hábito gregário e 56% utilizavam algum tipo de abrigo para alimentação e/ou defesa. Seis espécies de Lepidoptera identificadas (27%) eram polífagas, três (14%) oligófagas e 13 (59%) tiveram apenas uma única espécie de planta hospedeira registrada. As espécies mais abundantes de mariposas apresentaram dois períodos reprodutivos no ano, predominantemente, no inverno e outono. Fatores abióticos, como a forte insolação na primavera e verão na formação aberta de restinga, podem ser importantes determinando esse padrão temporal de reprodução dos insetos, mas não podemos descartar também fatores bióticos como a pressão de inimigos naturais.