Effects of interleukin-27 on human CD8 T Cells

Mémoire numérisé par la Division de la gestion de documents et des archives de l'Université de Montréal.

Étude de la fonction de l'interleukine-21 dans le système immunitaire

Mémoire numérisé par la Direction des bibliothèques de l'Université de Montréal.

L'interleukine-21 : un nouveau joueur dans l'homéostasie des lymphocytes T mémoires CD8 ⁺ et dans l'hématopoïèse

Mémoire numérisé par la Direction des bibliothèques de l'Université de Montréal.

Étude de la fonction de l'interleukine-21 dans le système immunitaire

Mémoire numérisé par la Direction des bibliothèques de l'Université de Montréal.

L'interleukine-21 : un nouveau joueur dans l'homéostasie des lymphocytes T mémoires CD8 ⁺ et dans l'hématopoïèse

Mémoire numérisé par la Direction des bibliothèques de l'Université de Montréal.

Rôle du récepteur REG/EXTL3 dans l’inflammation et son implication possible dans l’ostéoarthrose (OA)

L’ostéoarthrose (OA) est une maladie articulaire dont l’incidence augmente avec le vieillissement de la population. Elle se caractérise par une détérioration progressive du cartilage articulaire accompagnée du remodelage de l’os sous-chondral et du changement des tissus mous de l’articulation. La douleur et le dysfonctionnement de l’articulation affectée sont généralement attribués à l’inflammation et l’épanchement de la synovie. Plusieurs évidences indiquent que l’inflammation de la membrane synoviale contribue grandement à la pathogenèse de l’OA. En effet, la synthèse et l’expression des enzymes protéolytiques qui dégradent la matrice cartilagineuse sont régulées par de nombreuses cytokines retrouvées au sein de ce foyer inflammatoire. Deux d’entre elles, l’interleukine-1 beta (IL-1β) et le «tumor necrosis factor » alpha (TNF-α), jouent un rôle majeur dans le déclenchement de l’inflammation associée à l’OA. Ces cytokines pro-inflammatoires agissent notamment sur les synoviocytes et les chondrocytes en activant NF-κB qui, à son tour, active les gènes de cytokines. Cette boucle de régulation positive amplifie et perpétue la réponse inflammatoire. Récemment, il a été rapporté que l’activation de NF-κB par TNF-α peut être potentialisée par EXTL3, un récepteur transmembranaire ; mais le mécanisme sous-jacent de cet effet demeure inconnu. Toutefois, les niveaux important d’EXTL3 et de son ligand Reg1B chez les patients arthrosiques, laissent croire que ces protéines jouent un rôle dans le développement de l’OA. Notre objectif était d’étudier le mécanisme par lequel EXTL3 amplifie l’activation de NF-κB par TNF-α et d’examiner si ce phénomène se produit aussi avec l’IL-1β. Nous avons utilisé les cellules C28/I2, une lignée cellulaire de chondrocytes, comme modèle d’étude. Les transfections transitoires avec un vecteur d’expression, les techniques d’immunofluorescence (IF), d’immunoprécipitation (IP) et d’immunobuvardage de type Western (IB); ont été utilisées dans le cadre de diverses approches expérimentales. Les résultats obtenus par transfection ont révélé que la protéine EXTL3 potentialisait l’activation de NF-κB aussi bien par IL-1β que par TNF-α. Ce résultat signifie que la potentialisation de l’activité NF-κB par EXTL3 n’est pas spécifique à TNF-α. D’autre part, l’IP avec TNFRI et TRAF2 a révélé la présence d’EXTL3 dans le complexe TNF-α/TNFRI/TRAF2 qui se forme au niveau de la membrane plasmique. De plus, ceci a été confirmé in vivo par microscopie confocale montrant la co-localisation de TNFRI-TRAF2-EXTL3 dans la membrane nucléaire, suggérant ainsi la formation d’un complexe identique au niveau des membranes plasmique et nucléaires. Toutefois, la présence du ligand Reg1B et/ou de la glucosamine inhibait la formation de ce complexe au niveau de la membrane plasmique, tout comme ils abolissaient la potentialisation de l’activité NF-κB par EXTL3. Ces résultats suggèrent non seulement que le recrutement d’EXTL3 libre dans le complexe TNF-α/TNFR1 est requis pour amplifier l’activation de NF-κB par TNF-α, mais aussi la capacité du ligand Reg1B et de la glucosamine à moduler cette activation à travers la baisse ou l’inhibition de l’interaction EXTL3-TNFR1. Les données de cette étude constituent une avancée majeure dans la compréhension des événements moléculaires qui contrôlent l’activation de NF-κB par les cytokines pro-inflammatoires. Ces résultats pourraient conduire au développement de nouvelles approches thérapeutiques pour le traitement de l’inflammation associée à l’OA et impliquant une activation incessante de NF-κB.

Les ligands du récepteur au CNTF dans le système immunitaire

Thèse numérisée par la Direction des bibliothèques de l'Université de Montréal.

Les ligands du récepteur au CNTF dans le système immunitaire

Thèse numérisée par la Direction des bibliothèques de l'Université de Montréal.

Cytokine secretion via cholesterol-rich lipid raft-associated SNAREs at the phagocytic cup

Lipopolysaccharide-activated macrophages rapidly synthesize and secrete tumor necrosis factor α (TNFα) to prime the immune system. Surface delivery of membrane carrying newly synthesized TNFα is controlled and limited by the level of soluble N-ethylmaleimide-sensitive factor attachment protein receptor (SNARE) proteins syntaxin 4 and SNAP-23. Many functions in immune cells are coordinated from lipid rafts in the plasmamembrane, and we investigated a possible role for lipid rafts in TNFα trafficking and secretion. TNFα surface delivery and secretion were found to be cholesterol- dependent. Upon macrophage activation, syntaxin 4 was recruited to cholesterol-dependent lipid rafts, whereas its regulatory protein, Munc18c, was excluded from the rafts. Syntaxin 4 in activated macrophages localized to discrete cholesterol-dependent puncta on the plasmamembrane, particularly on filopodia. Imaging the early stages of TNFα surface distribution revealed these puncta to be the initial points of TNFα delivery. During the early stages of phagocytosis, syntaxin 4 was recruited to the phagocytic cup in a cholesterol dependent manner. Insertion of VAMP3-positive recycling endosome membrane is required for efficient ingestion of a pathogen. Without this recruitment of syntaxin 4, it is not incorporated into the plasma membrane, and phagocytosis is greatly reduced. Thus, relocation of syntaxin 4 into lipid rafts in macrophages is a critical and rate-limiting step in initiating an effective immune response.

A role for the phagosome in cytokine secretion

Membrane traffic in activated macrophages is required for two critical events in innate immunity: proinflammatory cytokine secretion and phagocytosis of pathogens. We found a joint trafficking pathway linking both actions, which may economize membrane transport and augment the immune response. Tumor necrosis factor α (TNFα) is trafficked from the Golgi to the recycling endosome (RE), where vesicle-associated membrane protein 3 mediates its delivery to the cell surface at the site of phagocytic cup formation. Fusion of the RE at the cup simultaneously allows rapid release of TNFα and expands the membrane for phagocytosis.

Flightless, secreted through a late endosome/lysosome pathway, binds LPS and dampens cytokine secretion.

Flightless (Flii) is upregulated in response to wounding and has been shown to function in wound closure and scarring. In macrophages intracellular Flii negatively modulates TLR signalling and dampens cytokine production. We now show that Flii is constitutively secreted from macrophages and fibroblasts and is present in human plasma. Secretion from fibroblasts is upregulated in response to scratch wounding and LPS-activated macrophages also temporally upregulate their secretion of Flii. Using siRNA, wild-type and mutant proteins we show that Flii is secreted via a late endosomal/lysosomal pathway that is regulated by Rab7 and Stx11. Flii contains 11 leucine rich repeat (LRR) domains in its N-terminus that have nearly 50% similarity to those in the extracellular pathogen binding portion of Toll-like receptor 4 (TLR4). We show secreted Flii can also bind LPS and has the ability to alter macrophage activation. LPS activation of macrophages in Flii depleted conditioned media leads to enhanced macrophage activation and increased TNF secretion compared to cells activated in the presence of Flii. These results show secreted Flii binds to LPS and in doing so alters macrophage activation and cytokine secretion, suggesting that like the intracellular pool of Flii, secreted Flii also has the ability to alter inflammation.

Inflammatory cytokine responses to progressive resistance training and supplementation with fortified milk in men aged 50+ years : an 18-month randomized controlled trial

We examined the effects of progressive resistance training (PRT) and supplementation with calcium-vitamin D(3) fortified milk on markers of systemic inflammation, and the relationship between inflammation and changes in muscle mass, size and strength. Healthy men aged 50-79 years (n = 180) participated in this 18-month randomized controlled trial that comprised a factorial 2 x 2 design. Participants were randomized to (1) PRT + fortified milk supplement, (2) PRT, (3) fortified milk supplement, or (4) a control group. Participants assigned to PRT trained 3 days per week, while those in the supplement groups consumed 400 ml day(-1) of milk containing 1,000 mg calcium plus 800 IU vitamin D(3). We collected venous blood samples at baseline, 12 and 18 months to measure the serum concentrations of IL-6, TNF-alpha and hs-CRP. There were no exercise x supplement interactions, but serum IL-6 was 29% lower (95% CI, -62, 0) in the PRT group compared with the control group after 12 months. Conversely, IL-6 was 31% higher (95% CI, -2, 65) in the supplement group compared with the non-supplemented groups after 12 and 18 months. These between-group differences did not persist after adjusting for changes in fat mass. In the PRT group, mid-tibia muscle cross-sectional area increased less in men with higher pre-training inflammation compared with those men with lower inflammation (net difference similar to 2.5%, p < 0.05). In conclusion, serum IL-6 concentration decreased following PRT, whereas it increased after supplementation with fortified milk concomitant with changes in fat mass. Furthermore, low-grade inflammation at baseline restricted muscle hypertrophy following PRT.