Investigation of the relationship between protein, message and inducer concentrations in recombinant E-coli cells

Chloramphenicol acetyl transferase (CAT) protein and mRNA levels in E. coli were determined following induction of a tac::cat construct by isopropyl-beta-thiogalactopyranoside (IPTG). High cat mRNA levels did not directly reflect CAT protein levels, in either shakeflask experiments or fermentations. Furthermore, concentrations of IPTG resulting in the highest levels of expression of cat mRNA, were different to those resulting in highest levels of CAT protein. The data suggest that high transcriptional activities lead to limitations at the translational level.

Metabolic activation of heterocyclic amines and other procarcinogens in Salmonella typhimurium umu tester strains expressing human cytochrome P4501A1, 1A2, 1B1, 2C9, 2D6, 2E1, and 3A4 and human NADPH-P450 reductase and bacterial O-acetyltransferase

We investigated roles of different forms of cytochrome P450 (P450 or CYP) in the metabolic activation of heterocyclic amines (HCAs) and other procarcinogens to genotoxic metabolite(s) in the newly developed umu tester strains Salmonella typhimurium (S. typhimurium) OY1002/1A1, OY1002/1A2, OY1002/1B1, OY1002/2C9, OY1002/2D6, OY1002/2E1 and OY 1002/3A4. which express respective human P450 enzymes and NADPH-cytochrome P350 reductase (reductase) and bacterial O-acetyltransferase (O-AT). These strains were established by introducing two plasmids into S. typhimurium TA 1535, one carrying both P450 and the reductase cDNA in a bicistronic construct under control of an IPTG-inducible double me promoter and the other, pOA 102, carrying O-AT and umuClacZ fusion genes. Expression levels of CYP were found to range between 35 to 550 nmol/l cell culture in the strains tested. O-AT activities in different strains ranged from 52 to 135 nmol isoniazid acetylated/min/mg protein. All HCAs tested, and 2-aminoanthracene and 2-aminofluorene exhibited high genotoxicity in the OY1002/1A2 strain, and genotoxicity of 2-amino-3-methylimidazo [4,5-f]quinoline was detected in both the OY1002/1A1 and OY1002/1A2 strains. 1-Amino-1,4-dimethyl-5H-pyrido[4.3-b]-indole and 3-amino-1-methyl-5H-pyrido[4,3-b]-indole were activated in the OY1002/1A1, OY1002/1B1, OY1002/1A2, and OY1002/3A4 strains. Aflatoxin B-1 exhibited genotoxicity in the OY1002/1A2, OY1002/1A1, and OY1002/3A4 strains. beta -Naphthylamine and benzo[a]pyrene did not exhibit genotoxicity in any of the strains. These results suggest that CYP1A2 is the major cytochrom P450 enzyme involved in bioactivation of HCAs. (C) 2001 Elsevier Science B.V. All rights reserved.

Análise da produção de uma amidase recombinante de pseudomonas aeruginosa

O presente trabalho consistiu na optimização da produção da amidase (EC.3.5.1.4 recombinante de Escherichia coli cujo gene foi isolado de Pseudomonas aeruginosa 8602. O efeito na agregação do enzima in vivo de diversos parâmetros de crescimento, tais como concentração de IPTG, temperatura de incubação e 3% de etanol, foi estudado por combinação da actividade enzimática com a espectrocospia de FTIR. Os resultados demosntraram que ocorreu a formação de amidase agregada na forma de corpos de inclusão em todas as condições de crescimento. A actividade enzimática máxima obtida na fracção solúvel ocorreu para a condição de 4,40 mM IPTG com etanol a 37º C enquanto que nas fracções insolúveis a actividade enzimática máxima obtida foi para a condição de 0,70mM IPTG com etanol a 25ºC. Verificou-se ainda que o etanol nas condições de crescimento de 25ºC permitiu uma elevada expressão de amidase, mas que agragou numa forma biologicamente activa apresentando para determinadas condições um aumento de 60% de actividade específica em relação à fracção solúvel. A espectrocospia de FTIR foi utilizada para o estudo de possíveis alterações estruturais da amidase produzida nas diversas condições de crescimento. Constatou-se assim que para todas as condições de crescimento, a amidase agregou na forma de corpos de inclusão devido ao aumento de folhas-β agregadas resultante de um aumento de interacções intermoleculares comparativamente ao enzima purificado. De um modo geral as condições a 25ºC formam maior quantidade de folhas-β agregadas que as condições a 37ºC, principalmente na presença de etanol. Verificou-se ainda que os corpos de inclusão das condições de crescimento de 37ºC apresentam uma estrutura secundária mais semelhante com a solução de amidase purificada relativamente às condições de 25ºC. No entanto as condições de 37ºC apresentam agragados com menor actividade possivelmente devido à ocorrência de interacções intermoleculares associadas a uma estrutura secundária mais semelhante à nativa. A solubilização não desnaturante da amidase nos corpos de inclusão foi efectuada com sucesso na presença de L-Arginina obtendo-se maior rendimento de solubilização para as condições a 37ºC, comprovando a menor quantidade de interacções intermoleculares nestes agregados e uma estrutura secundária do enzima agregado semelhante à nativa.

Pseudomonas aeruginosa amidase: Aggregation in recombinant Escherichia coli

The effect of cultivation parameters such as temperature incubation, IPTG induction and ethanol shock on the production of Pseudomonasaeruginosa amidase (E.C.3.5.1.4) in a recombinant Escherichia coli strain in LB ampicillin culture medium was investigated. The highest yield of solubleamidase, relatively to other proteins, was obtained in the condition at 37 degrees C using 0.40 mM IPTG to induce growth, with ethanol. Our results demonstrate the formation of insoluble aggregates containing amidase, which was biologically active, in all tested growth conditions. Addition of ethanol at 25 degrees C in the culture medium improved amidase yield, which quantitatively aggregated in a biologically active form and exhibited in all conditions an increased specific activity relatively to the soluble form of the enzyme. Non-denaturing solubilization of the aggregated amidase was successfully achieved using L-arginine. The aggregates obtained from conditions at 37 degrees C by Furier transform infrared spectroscopy (FTIR) analysis demonstrated a lower content of intermolecular interactions, which facilitated the solubilization step applying non-denaturing conditions. The higher interactions exhibited in aggregates obtained at suboptimal conditions compromised the solubilization yield. This work provides an approach for the characterization and solubilization of novel reported biologically active aggregates of this amidase.

Proteínas recombinantes de Plasmodium Falciparum para deteção de malária por nanoimunoensaios

Dissertação para obtenção do Grau de Mestre em Biotecnologia

Expressão e purificação da proteína E3 do vírus chikungunya (CHIKV)

RESUMO: O vírus chikungunya (CHIKV) é um vírus de RNA, com invólucro, da família Togaviridae, transmitido por mosquitos Aedes spp. Distribuído por largas regiões de África e Ásia, causa grandes epidemias de artrite grave. A semelhança de sintomas com outras doenças como a dengue e a malária e a persistência de IgM específicas, dificultam o diagnóstico da infeção por CHIKV. A deteção no sangue de E3, uma glicoproteína viral secretada, a incluir num ensaio imunoenzimático poderá melhorar o diagnóstico nos países onde as técnicas de biologia molecular são de difícil acesso. Para testar a utilidade de E3 num ensaio de diagnóstico, esta deverá ser expressa em quantidade, purificada e usada para produção de anticorpos específicos. Para expressar E3 numa forma solúvel, suscetível de ser purificada num único passo cromatográfico sem proteases, recorreu-se à estratégia da fusão com o domínio de ligação à quitina (CBD)-inteína (IMPACT™ System, NEB). A sequência codificadora de E3 foi amplificada a partir de RNA viral, clonada em pTYB21 e expressa em E. coli como uma proteína de fusão insolúvel de 64 kDa. A expressão a 12ºC induzida por IPTG 0,1 mM aumentou a solubilidade de CBD-inteína-E3. A aplicação de lisados celulares em colunas de quitina originou a retenção de CBD-inteína-E3 na matriz. Porém, a autoclivagem da inteína na coluna, induzida com reagentes tiol, foi pouco eficiente e mesmo a proteína E3 separada não eluiu da coluna. E3 foi ainda expressa em E. coli com uma cauda de seis histidinas (E3[His]6) por clonagem no vetor pET28b(+). Lisados celulares aplicados em colunas de níquel permitiram a eluição de uma proteína de 9 kDa, compatível com a massa molecular estimada para E3[His]6, ainda que com outros contaminantes proteicos. A identidade da proteína de 9 kDa será confirmada pela indução de anticorpos com esta preparação e reatividade daqueles com células infetadas com CHIKV.----------------ABSTRACT: Chikungunya virus (CHIKV) is an enveloped, positive strand RNA virus belonging to the family Togaviridae. Transmitted by Aedes spp mosquitoes, CHIKV causes large epidemics of severe arthritogenic disease in Africa and Asia and represents a serious threat in countries where vectors are present. Symptoms similarity with other diseases, e.g. dengue and malaria, along with CHIKV IgM persistence turns accurate CHIKV diagnosis a difficult task in low-income countries. Detection of E3, a small secreted viral glycoprotein, to be included in an immunoenzymatic test was envisaged as a possible improvement in CHIKV diagnosis. To test the diagnostic value of E3, recombinant E3 should be expressed and purified to generate antibodies. In order to express CHIKV E3 in a soluble form amenable to purification by a single step affinity chromatography, the chitin binding domain (CBD)-intein fusion strategy without proteases (IMPACT™ System, NEB) was employed. The E3 coding sequence was amplified from viral RNA, cloned in pTYB21 and expressed in E. coli ER2566 as an insoluble 64 kDa CBD-intein-E3 fusion protein. Solubility was partially achieved by lowering the expression temperature to 12ºC and the inducer (IPTG) concentration to 0.1 mM. Clarified cell lysate loaded onto a chitin column allowed ligation of the fusion protein but the intein-mediated cleavage efficiency was low and E3 failed to elute from the column as demonstrated by SDS-PAGE. E3 was further expressed with a six histidine tag, E3[His]6, employing the pET System (Novagen). E3[His]6 was expressed in E. coli Rosetta (30ºC, 0.4 mM IPTG) as a 9 kDa protein. Soluble cell extracts in 20-40 mM imidazole, applied onto a nickel column and eluted with 500 mM imidazole yielded a protein preparation enriched in the 9kDa protein. The 9 kDa will be used as antigen to generate antibodies that upon reaction with CHIKV infected cells will confirm its identity.

tagO is involved in the synthesis of all anionic cell-wall polymers in Bacillus subtilis 168.

Sequence homologies suggest that the Bacillus subtilis 168 tagO gene encodes UDP-N-acetylglucosamine:undecaprenyl-P N-acetylglucosaminyl 1-P transferase, the enzyme responsible for catalysing the first step in the synthesis of the teichoic acid linkage unit, i.e. the formation of undecaprenyl-PP-N-acetylglucosamine. Inhibition of tagO expression mediated by an IPTG-inducible P(spac) promoter led to the development of a coccoid cell morphology, a feature characteristic of mutants blocked in teichoic acid synthesis. Indeed, analyses of the cell-wall phosphate content, as well as the incorporation of radioactively labelled precursors, revealed that the synthesis of poly(glycerol phosphate) and poly(glucosyl N-acetylgalactosamine 1-phosphate), the two strain 168 teichoic acids known to share the same linkage unit, was affected. Surprisingly, under phosphate limitation, deficiency of TagO precludes the synthesis of teichuronic acid, which is normally induced under these conditions. The regulatory region of tagO, containing two partly overlapping sigma(A)-controlled promoters, is similar to that of sigA, the gene encoding the major sigma factor responsible for growth. Here, the authors discuss the possibility that TagO may represent a pivotal element in the multi-enzyme complexes responsible for the synthesis of anionic cell-wall polymers, and that it may play one of the key roles in balanced cell growth.

The Pseudomonas aeruginosa antimetabolite L-2-amino-4-methoxy-trans-3-butenoic acid inhibits growth of Erwinia amylovora and acts as a seed germination-arrest factor

The Pseudomonas aeruginosa antimetabolite L-2-amino-4-methoxy-trans-3-butenoic acid (AMB) shares biological activities with 4-formylaminooxyvinylglycine, a related molecule produced by Pseudomonas fluorescens WH6. We found that culture filtrates of a P.aeruginosa strain overproducing AMB weakly interfered with seed germination of the grassy weed Poa annua and strongly inhibited growth of Erwinia amylovora, the causal agent of the devastating orchard crop disease known as fire blight. AMB was active against a 4-formylaminooxyvinylglycine-resistant isolate of E.amylovora, suggesting that the molecular targets of the two oxyvinylglycines in Erwinia do not, or not entirely, overlap. The AMB biosynthesis and transport genes were shown to be organized in two separate transcriptional units, ambA and ambBCDE, which were successfully expressed from IPTG-inducible tac promoters in the heterologous host P.fluorescens CHA0. Engineered AMB production enabled this model biocontrol strain to become inhibitory against E.amylovora and to weakly interfere with the germination of several graminaceous seeds. We conclude that AMB production requires no additional genes besides ambABCDE and we speculate that their expression in marketed fire blight biocontrol strains could potentially contribute to disease control.

Clonagem e purificação de fragmento da proteína capsidial de Banana streak OL virus

O objetivo deste trabalho foi clonar e induzir a expressão de fragmento da proteína capsidial de Banana streak OL virus (BSOLV-CP) em Escherichia coli, bem como purificar a proteína recombinante obtida. Empregou-se um par de iniciadores específicos para amplificar, em PCR, um fragmento de aproximadamente 390 pb, da região codificadora da porção central da BSOLV-CP. O fragmento obtido foi clonado em vetor pGEM-T Easy, subclonado em vetor pQE-30 e transformado em células de E. coli M15 (pREP4) por choque térmico. A expressão da proteína foi induzida por tiogalactopiranosídeo de isopropila (IPTG), e a proteína recombinante BSOLV-rcCP de 14 kDa foi detectada em Western blot e Dot blot. A expressão da proteína BSOLV-rcCP abre novas possibilidades para a obtenção de antígenos para a produção de antissoros contra o BSOLV.

Caracterização do gene vip3A e toxicidade da proteína Vip3Aa50 à lagarta-do-cartucho e à lagarta-da-soja

O objetivo deste trabalho foi caracterizar o gene vip3A de Bacillus thuringiensis e verificar a toxicidade da proteína Vip3Aa50 a larvas da lagarta-do-cartucho (Spodoptera frugiperda) e da lagarta-da-soja (Anticarsia gemmatalis). O gene vip3A foi amplificado por PCR, com iniciadores específicos, e gerou um fragmento de 2.370 pb. Esse fragmento foi clonado em vetor pGEM-T Easy e, em seguida, sequenciado, subclonado em vetor de expressão pET-28a (+) e inserido em células de Escherichia coli BL21 (DE3). A expressão da proteína Vip3Aa50 foi induzida por isopropil-β-D-1-tiogalactopiranosídeo (IPTG), visualizada em SDS-PAGE e detectada por "Western blot". Os ensaios de toxicidade revelaram alta atividade da proteína Vip3Aa50 contra as larvas neonatas da lagarta-da-soja e da lagarta-do-cartucho, com CL50 de 20,3 e 79,6 ng cm-2, respectivamente. O gene vip3Aa50 é um novo gene da classe vip3A.

Orthologous and heterologous expression of a protein from Saccharomyces cerevisiae: Optimization for a biotechnological application

In this thesis (TFG) the results of the comparison between different methods to obtain a recombinant protein, by orthologous and heterologous expression, are exposed. This study will help us to identify the best way to express and purify a recombinant protein that will be used for biotechnology applications. In the first part of the project the goal was to find the best expression and purification system to obtain the recombinant protein of interest. To achieve this objective, a system expression in bacteria and in yeast was designed. The DNA was cloned into two different expression vectors to create a fusion protein with two different tags, and the expression of the protein was induced by IPTG or glucose. Additionally, in yeast, two promoters where used to express the protein, the one corresponding to the same protein (orthologous expression), and the ENO2 promoter (heterologous expression). The protein of interest is a NAD-dependent enzyme so, in a second time, its specific activity was evaluated by coenzyme conversion. The results of the TFG suggest that, comparing the model organisms, bacteria are more efficient than yeast because the quantity of protein obtained is higher and better purified. Regarding yeast, comparing the two expression mechanisms that were designed, heterologous expression works much better than the orthologous expression, so in case that we want to use yeast as expression model for the protein of interest, ENO2 will be the best option. Finally, the enzymatic assays, done to compare the effectiveness of the different expression mechanisms respect to the protein activity, revealed that the protein purified in yeast had more activity in converting the NAD coenzyme.

Immunization against the colonization factor antigen I of enterotoxigenic Escherichia coli by administration of a bivalent Salmonella typhimurium aroA strain

An expression plasmid (pCFA-1) carrying the cfaB gene that codes for the enterotoxigenic Escherichia coli (ETEC) fimbrial adhesin colonization factor antigen I (CFA/I) subunit was constructed and used to transform a derivative of the attenuated Salmonella typhimurium aroA vaccine strain SL3261 carrying an F'lacIq. Treatment of the transformed strain with isopropyl-ß-D-thiogalactopyranoside (IPTG) resulted in elevated in vitro expression of the CFA/I subunit. Although flagellar function and lipopolysaccharide (LPS) synthesis were similar in both the parental and the recombinant strains, spleen colonization was reduced in the recombinant strain. All BALB/c mice parenterally inoculated with the recombinant strain developed significant anti-CFA/I and anti-LPS serum antibody titers (P<0.05). Moreover, 2 of 5 mice orally inoculated with the engineered Salmonella strain developed anti-CFA/I intestinal IgA (P>0.05) while 4/5 of the same mice developed anti-LPS IgA (P<0.05). The results indicate that the vaccine strain elicited an antibody response against the bacterial host both after oral and intravenous immunization while the response against the CFA/I antigen was significant only after inoculation by the intravenous route

Expression and biological activity of two recombinant polypeptides related to subunit 1 of the interferon-a receptor

Abnormal production of interferon alpha (IFN-a) has been found in certain autoimmune diseases and can be also observed after prolonged therapy with IFN-a. IFN-a can contribute to the pathogenesis of allograft rejection in bone marrow transplants. Therefore, the development of IFN-a inhibitors as a soluble receptor protein may be valuable for the therapeutic control of these diseases. We have expressed two polypeptides encoding amino acids 93-260 (P1) and 261-410 (P2) of the extracellular domain of subunit 1 of the interferon-a receptor (IFNAR 1-EC) in E. coli. The activities of the recombinant polypeptides and of their respective antibodies were evaluated using antiproliferative and antiviral assays. Expression of P1 and P2 polypeptides was achieved by transformation of cloned plasmid pRSET A into E. coli BL21(DE3)pLysS and by IPTG induction. P1 and P2 were purified by serial sonication steps and by gel filtration chromatography with 8 M urea and refolded by dialysis. Under reducing SDS-PAGE conditions, the molecular weight of P1 and P2 was 22 and 17 kDa, respectively. Polyclonal anti-P1 and anti-P2 antibodies were produced in mice. P1 and P2 and their respective polyclonal antibodies were able to block the antiproliferative activity of 6.25 nM IFN-aB on Daudi cells, but did not block IFN-aB activity at higher concentrations (>6.25 nM). On the other hand, the polypeptides and their respective antibodies did not inhibit the antiviral activity of IFN-aB on Hep 2/c cells challenged with encephalomyocarditis virus.

Estudo da estabilidade do plasmídeo e da expressão de jaburetox-2Ec em Escherichia coli BL 21 utilizando lactose como indutor

A seqüência de nucleotídeos codificante do peptídeo derivado da hidrólise da canatoxina (jaburetox-2Ec), foi clonada e expressa nos sistema pET101/E. coli BL 21. Neste trabalho, estudamos a estabilidade dos plasmídeos da série pET contendo a seqüência codificante do jaburetox-2Ec no sistema de expressão E. coli BL 21 (Mulinari, 2004), e as condições para aumentar produção do peptídeo recombinante, avaliando a velocidade de transferência de oxigênio, o controle do pH, e a utilização da lactose como indutor em substituição ao IPTG. O cultivo da bactéria recombinante em incubadora orbital contendo 10 g/l de lactose como indutor produziu 1,26 μg de jaburetox-2Ec/mg de proteína total após oito horas de cultivo. A estabilidade do plasmídeo e a expressão do peptídeo recombinante foram estudadas em biorreatores. A expressão do jaburetox-2Ec foi fortemente afetada pelo pH da cultura, com a diminuição de mais de 50 % da concentração desse peptídeo quando ocorre acidificação do meio de cultura. Da mesma forma, o aumento da aeração e agitação tem efeito negativo sobre a produção do peptídeo, diminuindo em sete vezes a produção do jaburetox-2Ec Apesar do aumento da biomassa devido ao cultivo da E. coli recombinante em meio mínimo, contendo como fonte de carbono a glicose, isto não representou aumento da concentração do peptídeo recombinante. Contudo, sob a melhor condição de cultivo em biorreator estudada (pH controlado e menor transferência de oxigênio), obteve-se uma produção de 7,14 μg de jaburetox-2Ec/mg de proteína total, representando em torno de 2 % da proteína total da célula. Em todas as bateladas, após atingir a máxima expressão do peptídeo, essa concentração diminui provavelmente devido à atividade das proteases da célula causando a degradação do peptídeo recombinante. A carga metabólica imposta à célula devido à expressão do jaburetox-2Ec, é uma das possíveis causas da instabilidade do plasmídeo observada em todas as bateladas.

Biologia do gene pheA de Mycobacterium tuberculosis : clonagem, seqüenciamento e superexpressão do seu produto - a proteína prefenato desidratase

A Tuberculose (TB) é a principal causa de óbitos entre as doenças infecciosas causadas por um único agente. De acordo com a Organização Mundial da Saúde (OMS) o agente etiológico da TB no homem, o complexo Mycobacterium (M. tuberculosis, M. africanum, M. bovis) é responsável por cerca de 8 milhões de novas infecções e 3 milhões de mortes a cada ano no mundo. No começo da década de 80, a reemergência da TB em países em desenvolvimento deve-se à crescente incidência do Vírus da Imunodeficiência Humana (HIV), à falta de recursos para o tratamento desta doença e à proliferação de cepas resistentes a múltiplas drogas (MDR-TB). Esta situação criou a necessidade da busca por novos agentes antimicobacterianos capazes de reduzir o tempo de tratamento, melhorar a adesão dos pacientes ao mesmo e ser efetiva contra cepas MDR-TB. A via do chiquimato leva à biossíntese do corismato, o precursor de aminoácidos aromáticos, tirosina, triptofano e fenilalanina. A primeira reação na biossíntese de fenilalanina envolve a conversão de corismato a prefenato, catalisada pela corismato mutase. A segunda reação na biossíntese de fenilalanina é a descarboxilação e desidratação de prefenato a fenilpiruvato, catalisada pela prefenato desidratase. Embora ausente em mamíferos, esta via está presente em bactérias, algas, fungos, plantas e parasitos do Phyllum Apicomplexa. Esta rota é essencial em M. tuberculosis e, portanto, suas enzimas representam alvos potenciais para o desenvolvimento de novas drogas antimicobacterianas. O objetivo deste trabalho foi estudar o gene pheA da linhagem de M. tuberculosis H37Rv e seu produto, a enzima prefenato desidratase Para isso, DNA genômico de M. tuberculosis H37RV foi extraído e o gene pheA foi amplificado pela técnica de PCR, clonado no vetor de expressão pET-23a(+), seqüenciado e superexpresso em células de Escherichia coli BL21(DE3). Os resultados obtidos confirmaram a região predita para o gene pheA, que foi amplificado com sucesso, mostrando 963 pb, sendo que a presença de 10% dimetil sulfoxido (DMSO) mostrou ser essencial para permitir a desnaturação do DNA rico em bases G-C. Análise da seqüência nucleotídica pelo método de Sanger confirmou a identidade do gene clonado e demonstrou que nenhuma mutação foi introduzida pelos passos de PCR e clonagem. A enzima prefenato desidratase foi superexpressa em células de E. coli BL21(DE3) eletroporadas com pET-23a(+)::pheA. Análise por SDS-PAGE mostrou expressão significativa de uma proteína com aproximadamente 33kDa, estando de acordo com a massa molecular esperada para a prefenato desidratase. A proteína recombinante foi superexpressa sem a adição de IPTG, e a presença da proteína pôde ser detectada em todos os intervalos de tempo testados (6, 9 e 24 horas depois da OD600nm alcançar o valor de 0,5). Foi realizado ensaio enzimático com a prefenato desidratase de acordo com Gething et al. (1976) utilizando prefenato de bário como substrato e coeficiente de extinção molar de 17.500 a 320 nm para calcular a concentração de fenilpiruvato. Houve um aumento de 1766 vezes na atividade específica da prefenato desidratase no extrato bruto da proteína recombinante em relação ao controle, no qual o vetor pET23a(+) sem o gene pheA foi introduzido em células de E. coli BL21(DE3).