103 resultados para lysosome


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Burkholderia cenocepacia is a gram-negative opportunistic pathogen that belongs to the Burkholderia cepacia complex. B. cenocepacia can survive intracellularly within phagocytic cells, and some epidemic strains produce a brown melanin-like pigment that can scavenge free radicals, resulting in the attenuation of the host cell oxidative burst. In this work, we demonstrate that the brown pigment produced by B. cenocepacia C5424 is synthesized from a homogentisate (HGA) precursor. The disruption of BCAL0207 (hppD) by insertional inactivation resulted in loss of pigmentation. Steady-state kinetic analysis of the BCAL0207 gene product demonstrated that it has 4-hydroxyphenylpyruvic acid dioxygenase (HppD) activity. Pigmentation could be restored by complementation providing hppD in trans. The hppD mutant was resistant to paraquat challenge but sensitive to H2O2 and to extracellularly generated superoxide anions. Infection experiments in RAW 264.7 murine macrophages showed that the nonpigmented bacteria colocalized in a dextran-positive vacuole, suggesting that they are being trafficked to the lysosome. In contrast, the wild-type strain did not localize with dextran. Colocalization of the nonpigmented strain with dextran was reduced in the presence of the NADPH oxidase inhibitor diphenyleneiodonium, and also the inducible nitric oxide inhibitor aminoguanidine. Together, these observations suggest that the brown pigment produced by B. cenocepacia C5424 is a pyomelanin synthesized from an HGA intermediate that is capable of protecting the organism from in vitro and in vivo sources of oxidative stress.

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Burkholderia cenocepacia, a bacterium commonly found in the environment, is an important opportunistic pathogen in patients with cystic fibrosis (CF). Very little is known about the mechanisms by which B. cenocepacia causes disease, but chronic infection of the airways in CF patients may be associated, at least in part, with the ability of this bacterium to survive within epithelial cells and macrophages. Survival in macrophages occurs in a membrane-bound compartment that is distinct from the lysosome, suggesting that B. cenocepacia prevents phagolysosomal fusion. In a previous study, we employed signature-tagged mutagenesis and an agar bead model of chronic pulmonary infection in rats to identify B. cenocepacia genes that are required for bacterial survival in vivo. One of the most significantly attenuated mutants had an insertion in the mgtC gene. Here, we show that mgtC is also needed for growth of B. cenocepacia in magnesium-depleted medium and for bacterial survival within murine macrophages. Using fluorescence microscopy, we demonstrated that B. cenocepacia mgtC mutants, unlike the parental isolate, colocalize with the fluorescent acidotropic probe LysoTracker Red. At 4 h postinfection, mgtC mutants expressing monomeric red fluorescent protein cannot retain this protein within the bacterial cytoplasm. Together, these results demonstrate that, unlike the parental strain, an mgtC mutant does not induce a delay in phagolysosomal fusion and the bacterium-containing vacuoles are rapidly targeted to the lysosome, where bacteria are destroyed.

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Strains of the Burkholderia cepacia complex (Bcc) are opportunistic bacteria that can cause life-threatening infections in patients with cystic fibrosis and chronic granulomatous disease. Previous work has shown that Bcc isolates can persist in membrane-bound vacuoles within amoeba and macrophages without bacterial replication, but the detailed mechanism of bacterial persistence is unknown. In this study, we have investigated the survival of the Burkholderia cenocepacia strain J2315 within RAW264.7 murine macrophages. Strain J2315 is a prototypic isolate of the widespread and transmissible ET12 clone. Unlike heat-inactivated bacteria, which reach lysosomes shortly after internalization, vacuoles containing live B. cenocepacia J2315 accumulate the late endosome/lysosome marker LAMP-1 and start fusing with lysosomal compartments only after 6 h post internalization. Using fluorescent fluid-phase probes, we also demonstrated that B. cenocepacia-containing vacuoles continued to interact with newly formed endosomes, and maintained a luminal pH of 6.4 +/- 0.12. In contrast, vacuoles containing heat-inactivated bacteria had an average pH of 4.8 +/- 0.03 and rapidly merged with lysosomes. Additional experiments using concanamycin A, a specific inhibitor of the vacuolar H+-ATPase, revealed that vacuoles containing live bacteria did not exclude the H+-ATPase. This mode of bacterial survival did not require type III secretion, as no differences were found between wild type and a type III secretion mutant strain. Collectively, our results suggest that intracellular B. cenocepacia cause a delay in the maturation of the phagosome, which may contribute to facilitate bacterial escape from the microbicidal activities of the host cell.

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We have previously demonstrated that isolates of the Burkholderia cepacia complex can survive intracellularly in murine macrophages and in free-living Acanthamoeba. In this work, we show that the clinical isolates B. vietnamiensis strain CEP040 and B. cenocepacia H111 survived but did not replicate within vacuoles of A. polyphaga. B. cepacia-containing vacuoles accumulated the fluid phase marker Lysosensor Blue and displayed strong blue fluorescence, indicating that they had low pH. In contrast, the majority of intracellular bacteria within amoebae treated with the V-ATPse inhibitor bafilomycin A1 localized in vacuoles that did not fluoresce with Lysosensor Blue. Experiments using bacteria fluorescently labelled with chloromethylfluorescein diacetate demonstrated that intracellular bacteria remained viable for at least 24 h. In contrast, Escherichia coli did not survive within amoebae after 2 h post infection. Furthermore, intracellular B. vietnamiensis CEP040 retained green fluorescent protein within the bacterial cytoplasm, while this protein rapidly escaped from the cytosol of phagocytized heat-killed bacteria into the vacuolar lumen. Transmission electron microscopy analysis confirmed that intracellular Burkholderia cells were structurally intact. In addition, both Legionella pneumophila- and B. vietnamiensis-containing vacuoles did not accumulate cationized ferritin, a compound that localizes within the lysosome. Thus, our observations support the notion that B. cepacia complex isolates can use amoebae as a reservoir in the environment by surviving without intracellular replication within an acidic vacuole that is distinct from the lysosomal compartment.

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Cystic fibrosis is the most common inherited lethal disease in Caucasians. It is caused by mutations in the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR), of which the cftr ?F508 mutation is the most common. ?F508 macrophages are intrinsically defective in autophagy because of the sequestration of essential autophagy molecules within unprocessed CFTR aggregates. Defective autophagy allows Burkholderia cenocepacia (B. cepacia) to survive and replicate in ?F508 macrophages. Infection by B. cepacia poses a great risk to cystic fibrosis patients because it causes accelerated lung inflammation and, in some cases, a lethal necrotizing pneumonia. Autophagy is a cell survival mechanism whereby an autophagosome engulfs non-functional organelles and delivers them to the lysosome for degradation. The ubiquitin binding adaptor protein SQSTM1/p62 is required for the delivery of several ubiquitinated cargos to the autophagosome. In WT macrophages, p62 depletion and overexpression lead to increased and decreased bacterial intracellular survival, respectively. In contrast, depletion of p62 in ?F508 macrophages results in decreased bacterial survival, whereas overexpression of p62 leads to increased B. cepacia intracellular growth. Interestingly, the depletion of p62 from ?F508 macrophages results in the release of the autophagy molecule beclin1 (BECN1) from the mutant CFTR aggregates and allows its redistribution and recruitment to the B. cepacia vacuole, mediating the acquisition of the autophagy marker LC3 and bacterial clearance via autophagy. These data demonstrate that p62 differentially dictates the fate of B. cepacia infection in WT and ?F508 macrophages.

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In order to investigate cytolytic activity in the testis of Fasciola hepatica, flukes belonging to several different triclabendazole (TCBZ)-sensitive and TCBZ-resistant isolates, and wildtype flukes from field infections, were studied by light and electron microscopy with a view to identifying sites of heterophagy and macromolecular hydrolysis. At the periphery of the testis tubules in all the flukes examined, large euchromatic nuclei, each bearing a prominent nucleolus, were seen. These were invested with a thin cytoplasmic layer, extensions of which partially enveloped and probably supported the neighbouring spermatogonia. No lateral cell boundaries were identified in this tissue, possibly indicating syncytial organisation. The tissue, considered to be analogous to Sertoli cells in vertebrate testis, was identified as sustentacular tissue. It displayed cytoplasmic features consistent with protein/glycoprotein synthesis (through a granular endoplasmic reticulum-Golgi mediated mechanism) and intracellular digestion/heterophagy (through a lysosomal system). The intracytoplasmic hydrolytic activity of the sustentacular tissue probably serves to scavenge effete cells and cytoplasmic debris, to recycle useful molecules, to promote spermatozoon maturation and possibly to aid osmoregulation within the tubules. Certain protein-containing macromolecules synthesised in the sustentacular tissue may contribute to the seminiferous fluid, or have pheromonal activity. The presence of numerous mitochondria and abundant smooth endoplasmic reticulum is consistent with facilitation of inward and outward movement of micromolecular nutrients, metabolites including excretory products and water. In the sustentacular tissue of certain flukes with dysfunctional spermiogenesis, there was increased heterophagic and cytolytic scavenging activity. The cytoplasmic residual vacuoles remaining after the release of spermatids were also identified as possible sites for lysosome-mediated intracellular digestion and osmoregulation in the testis tubules of F. hepatica. (C) 2012 Elsevier B.V. All rights reserved.

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PURPOSE: The authors investigated the receptor-mediated endocytosis (RME) and intracellular trafficking of insulin and low-density lipoprotein (LDL) in cultured retinal vascular endothelial cells (RVECs). METHODS: Low-density lipoprotein and insulin were conjugated to 10 nm colloidal gold, and these ligands were added to cultured bovine RVECs for 20 minutes at 4 degrees C. The cultures were then warmed to 37 degrees C and fixed after incubation times between 30 seconds and 1 hour. Control cells were incubated with unconjugated gold colloid at times and concentrations similar to those of the ligands. Additional control cells were exposed to several concentrations of anti-insulin receptor antibody or a saturating solution of unconjugated insulin before incubation with gold insulin. RESULTS: Using transmission electron microscopy, insulin gold and LDL gold were both observed at various stages of RME. Insulin-gold particles were first seen to bind to the apical plasma membrane (PM) before clustering in clathrin-coated pits and internalization in coated vesicles. Gold was later visualized in uncoated cytoplasmic vesicles, corresponding to early endosomes and multivesicular bodies (MVBs) or late endosomes. In several instances, localized regions of the limiting membrane of the MVBs appeared coated, a feature of endosomal membranes not previously described. After RME at the apical PM and passage through the endosomal system, the greater part of both insulin- and LDL-gold conjugates was seen to accumulate in large lysosome-like compartments. However, a small but significant proportion of the internalized ligands was transcytosed and released as discrete membrane-associated quanta at the basal cell surface. The uptake of LDL gold was greatly increased in highly vacuolated, late-passage RVECs. In controls, anti-insulin receptor antibody and excess unconjugated insulin caused up to 89% inhibition in gold-insulin binding and internalization. CONCLUSION: These results illustrate the internalization and intracellular trafficking by RVECs of insulin and LDL through highly efficient RME, and they provide evidence for at least two possible fates for the endocytosed ligands. This study outlines a route by which vital macromolecules may cross the inner blood-retinal barrier.

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Burkholderia cenocepacia infects patients with cystic fibrosis. We have previously shown that B. cenocepacia can survive in macrophages within membrane vacuoles (BcCVs) that preclude fusion with the lysosome. The bacterial factors involved in B. cenocepacia intracellular survival are not fully elucidated. We report here that deletion of BCAM0628, encoding a predicted low-molecular weight protein tyrosine phosphatase (LMW-PTP) that is restricted to B. cenocepacia strains of the transmissible ET-12 clone, accelerates the maturation of the BcCVs. Compared to parental strain and deletion mutants in other LMW-PTPs that are widely conserved in Burkholderia species, a greater proportion of BcCVs containing the BCAM0628 mutant were targeted to the lysosome. Accelerated BcCV maturation was not due to reduced intracellular viability since BCAM0628 survived and replicated in macrophages similarly to the parental strain. Therefore, BCAM0628 was referred to as dpm (delayed phagosome maturation). We provide evidence that the Dpm protein is secreted during growth in vitro and upon macrophage infection. Dpm secretion requires an N-terminal signal peptide. Heterologous expression of Dpm in B. multivorans confers to this bacterium a similar phagosomal maturation delay as found with B. cenocepacia. We demonstrate that Dpm is an inactive phosphatase, suggesting that its contribution to phagosomal maturation arrest must be unrelated to tyrosine phosphatase activity.

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Aflatoxin B1 (AFB1), ochratoxin A (OTA) and fumonisin B1 (FB1) are contaminants which have been shown to regularly co-occur in a range of foods. However, only a small number of studies have evaluated the interactive effect of binary and tertiary mycotoxins. The present study evaluated the effects of low levels of each mycotoxin in combination at their EU regulatory limits. Toxic effect with respect to cell viability was measured by MTT and neutral red assays, assessing mitochondria and lysosome integrities respectively. Individual toxicity showed that OTA (10 μg/ml) was the most cytotoxic mycotoxin in all three cell lines studied (caco-2, MDBK and raw 264.7). Binary combinations were cytotoxic to the MDBK cell line in the order [OTA/FB1] > [AFB1/FB1] > [AFB1/OTA], whilst all effects observed were classified as being additive. Tertiary combinations of AFB1, FB1 and OTA at the EU regulatory limits were tested and not found to exhibit measurable cytotoxicity in MDBK, caco-2 or raw 264.7 cells. However by increasing these concentrations above the legal limits to OTA (3 μg/ml), FB1 (8 μg/ml) and AFB1 (1.28 μg/ml), cytotoxicity was observed with up to 26% reduction in cell viability and synergistic effects were evident with regard to mitochondrial integrity. © 2014 Elsevier Ltd. All rights reserved.

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L’apoptose est une forme de mort cellulaire essentielle au développement et au maintien de l’homéostase chez les animaux multicellulaires. La machinerie apoptotiq ue requiert la participation des caspases, des protéases conservées dans l’évolution et celle des organelles cytoplasmiques. Les lysosomes subissent des ruptures partielles, labilisation de la membrane lysosomale (LML), qui entraînent l’activation des cathepsines dans le cytoplasme de cellules cancéreuses humaines en apoptose induite par la camptothecin (CPT), incluant les histiocytes humains U-937. Ces modifications lysosomales se manifestent tôt durant l’activation de l’apoptose, concomitamment avec la perméabilisation de la mitochondrie et l’activation des caspases. Une étude protéomique quantitative et comparative a permis d’identifier des changements précoces dans l’expression/localisation de protéines lysosomales de cellules U-937 en apoptose. Lors de deux expériences indépendantes, sur plus de 538 protéines lysosomales identifiées et quantifiées grâce au marquage isobarique iTRAQ et LC-ESIMS/ MS, 18 protéines augmentent et 9 diminuent dans les lysosomes purifiés de cellules en cours d’apoptose comparativement aux cellules contrôles. Les candidats validés par immuno-buvardage et microscopie confocale incluent le stérol-4-alpha-carboxylate 3- déhydrogénase, le prosaposin et la protéine kinase C delta (PKC-d). Des expériences fonctionnelles ont démontrées que la translocation de PKC-d aux lysosomes est requise pour la LML puisque la réduction de son expression par ARN interférents ou l’inhibition de son activité à l’aide du rottlerin empêche la LML lors de l’apoptose induite par la CPT. La translocation de PKC-d aux lysosomes conduit à la phosphorylation et l’activation de la sphingomyelinase acide lysosomale (ASM), et à l’accroissement subséquent du contenu en céramide (CER) à la membrane lysosomale. Cette accumulation de CER endogène aux lysosomes est un évènement critique pour la LML induite par la CPT car l’inhibition de l’activité de PKC-d ou de ASM diminue la formation de CER et la LML.Ces résultats révèlent un nouveau mécanisme par lequel la PKC-d active l’ASM qui conduit à son tour à l’accumulation de CER à la membrane lysosomale et déclenche la LML et l’activation de la voie lysosomale de l’apoptose induite par la CPT. En somme, ce mécanisme confirme l’importance du métabolisme des sphingolipides dans l’activation de la voie lysosomale de l’apoptose.

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Endocytose joue un rôle dans l'activation du récepteur Notch. Des mutations dans le gène drosophilien lethal giant discs (lgd), provoque une prolifération cellulaire en perturbant l'endocytose de Notch. Les orthologues murins mlgd1 et 2 peuvent sauver ce phénotype, démontrant une fonction conservée. Cependant, des publications récentes suggèrent que les orthologs humains de lgd (hgd1/2) sont nucléaires. Dans cette étude, il est démontré que chez la Drosophile, le mutant dlgd(08) provoque l'accumulation de Notch dans des vésicules et une surprolifération de neuroblastes . Ceci suggère que Notch est activé a l'intérieur des endosomes dans les neuroblastes. L'immunohistochimie de cellules Hela indique que hlgd1 et 2 ne sont pas nucléaires, mais associés à des strctures endosomales. Enfin, la baisse d'expression par shRNA des gènes murins mlgd1 et mlgd2 provoque une différenciation accélérée des cellules souches hématopoïétiques dans la lignée lymphopoïèse T et bloque la transition DN3 / CD4+CD8+, suggérant une suractivation de Notch.

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L’autophagie est un processus cellulaire catabolique qui a été conservé durant l’évolution de la levure à l’homme. Cet important mécanisme consiste en une dégradation des composants cytoplasmiques dans une structure lytique, le lysosome. Il existe trois types de l’autophagie : la microautophagie, l’autophagie médiée par les chaperones et la macroautophagie nommée « autophagie ». Il a été démontré que lors de l’autophagie, le matériel cytoplasmique (protéines cytosoliques et organites) est séquestré dans l’autophagosome qui finit par fusionner avec le lysosome, formant ainsi l’autophagolysosome. Le matériel séquestré et la membrane interne de l’autophagosome seront dégradés par les hydrolases lysosomales. Plusieurs études se sont focalisées sur la détermination de la machinerie moléculaire et les mécanismes de l’autophagie. Il a été démontré l’implication de 31 molécules Atg essentielles dans le processus de l’autophagie. L’identification de ces protéines a permis de déceler le rôle de l’autophagie non seulement dans le maintien de l’homéostasie cellulaire mais aussi dans la défense contre les agents pathogènes. En effet, l’autophagie joue un rôle important dans l’immunité innée conduisant à contrôler l’évasion des pathogènes dont les bactéries et les virus. Également, l’autophagie est impliquée dans l’immunité adaptative en favorisant la présentation des antigènes viraux par le CMH de classe II aux cellules T CD4+. De plus, une étude récente suggère que l’autophagie contribue à la présentation antigénique par le CMH de classe I aux cellules T CD8+ durant une infection virale par le virus HSV-1 (Herpes simplex type 1). Toutefois, certains virus y compris HSV-1 ont pu développer des mécanismes pour contourner et inhiber en partie le rôle protecteur de l’autophagie. Récemment, une étude dans notre laboratoire a mis en évidence, lors d’une infection virale par HSV-1 des cellules macrophages BMA, la présence d’une nouvelle structure autophagique dans une phase tardive de l’infection. Cette nouvelle structure est différente des autophagosomes classiques à double membrane et est caractérisée morphologiquement par quatre membranes dérivées de l’enveloppe nucléaire interne et externe. Peu de choses ont été rapportées sur cette nouvelle voie autophagique qui peut être un mécanisme de défense cellulaire quand l’autophagie classique dans le cytosol est inhibée par HSV-1. Il devient donc intéressant de caractériser les molécules impliquées dans la formation de ces autophagosomes issus du noyau par spectrométrie de masse. Pour ce faire, il était impératif d’établir un outil d’isolation des noyaux à partir de macrophages infectés par HSV-1 dans lesquels les autophagosomes issus des noyaux seront formés. La validation de cette méthode d’isolation a été effectuée en déterminant la pureté et l’intégrité des noyaux isolés à partir des cellules non infectées (contrôle) et infectées par HSV-1. La pureté des préparations de noyaux isolés a été caractérisée par l’absence de contaminants cellulaires et un enrichissement en noyaux. Également, il a fallu déterminer la cinétique de formation des autophagosomes issus des noyaux pour les deux lignées cellulaires de macrophages utilisées dans ce projet. Dans une perspective future, l’analyse protéomique à partir des échantillons purs des noyaux isolés (non infectés et infectés) mènera à identifier les protéines impliquées dans la formation des autophagosomes dérivés des noyaux, ce qui permettra ultérieurement d’effectuer des études sur les mécanismes moléculaires et les fonctions de cette nouvelle voie autophagique.

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Mémoire numérisé par la Division de la gestion de documents et des archives de l'Université de Montréal.

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La leucémie myéloïde aigue (LMA), cancer du sang causé par une prolifération excessive des précurseurs myéloïdes à un stade précoce de maturation, est associée à une survie variant entre 20 et 30% à cinq ans en dépit des traitements de chimiothérapie les plus intensifs. L’antigène CD33 est exprimé chez les cellules malignes dans 90% des LMA ce qui en fait une cible de choix pour le développement d’immunoconjugué (IC). Trois IC composés d’un anticorps monoclonal anti-CD33 couplé à la maytansine, une toxine s’attaquant aux fuseaux mitotiques, ont été créés. Nous avons étudié l’effet de ces IC sur des cellules primaires et des lignées cellulaires LMA et étudier les mécanismes pouvant expliquer différents niveaux de sensibilité. Les études effectuées ont permis de déterminer que le niveau d’expression du CD33 n’explique pas la variation de sensibilité face aux IC. Il a été démontré que les IC anti-CD33 sont internalisés rapidement par la cellule et que le conjugué est retrouvé au niveau de l’endosome en premier lieu. Il a été confirmé que le lysosome est essentiel à l’effet anti-mitotique induit par le conjugué. Aussi, il est proposé que la protéine SOCS3 pourrait jouer un rôle dans la résistance aux IC anti-CD33 en dirigeant le complexe IC-CD33-SOCS3 vers le protéasome et ainsi empêcher la libération du composé toxique par le lysosome. Nous avons aussi conclu que les variations d’agent de liaison et l’augmentation du nombre de molécules toxiques entre les 3 IC n’ont pas été suffisantes pour augmenter leur efficacité à éliminer les cellules LMA. L’évaluation de ces IC ainsi que l’identification des mécanismes de résistance permettra de cibler les patients les plus susceptibles de bénéficier de ce type de traitement et potentiellement d’identifier de nouvelles voies pour améliorer l’efficacité des traitements.

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Le CD40 est une glycoprotéine transmembranaire de type I, appartenant à la famille des TNFRs, exprimée à la surface des cellules immunitaires, hématopoïétiques, vasculaires, épithéliales, et d’autres types de cellules, y compris les cellules tumorales. Le CD40 ne possédant pas de domaine kinase, pour induire un signal il interagit directement ou indirectement avec des protéines adaptatrices telles que les TRAFs et les JAKs. L’interaction du CD40 avec son principal ligand, le CD154, joue un rôle primordial dans la régulation de la réponse immunitaire et le maintien de l’homéostasie. L’activation du CD40 à la surface des cellules B augmente leur capacité de présentation d’antigène, en plus d’induire la prolifération, la commutation isotypique et l’apoptose. Les patients souffrant de mutations au niveau du gène codant pour le CD40 ou de son ligand sont immunosupprimés et sensibles à des infections opportunistes. Des études ont montré que le CD40 comme d’autres membres de la famille des TNFRs est capable de former des homodimères. Plus récemment, on a montré que la formation du CD40 homodimère est le résultat de son engagement sur les cellules B. En plus, cette homodimérisation du CD40 est importante pour la phosphorylation de l’Akt. L’interaction CD40/CD154 peut avoir un rôle direct dans l’immunothérapie par l’induction de l’apoptose de certaines cellules cancéreuses ou un rôle indirect en activant les cellules présentatrices d’antigènes (CPA) afin d'augmenter l’efficacité de l’activation des cellules T cytotoxiques. Nos résultats montrent que l’induction de la mort cellulaire par le CD40 requiert la perméabilisation du lysosome, la libération de la cathepsine B, la présence de ROS et une interaction avec le TRAF6, cette mort cellulaire programmée est plus importante en présence de la forme monomérique du CD40, muté au niveau de la cystéine 238. Par ailleurs, l’homodimérisation du CD40 requerrait sa translocation vers les radeaux lipidiques et nécessiterait la présence des ROS. Cette homodimérisation du CD40 semble être importante pour l’activation des cellules B par le biais de l’induction de l’expression du CD23, CD69 et CD80. De plus, nos résultats montrent pour la première fois une implication du CD40 homodimère dans l’induction du CD23 par le biais du TLR4. Nos résultats soulignent l’importance du CD40 homodimère dans certaines voies de signalisation. Ainsi, ils mettent en évidence le rôle de la Cys-238 dans la coopération entre des récepteurs de la réponse immunitaire innée et adaptative. Toutes ces données permettraient une meilleure compréhension de certaines voies de signalisation impliquées dans plusieurs maladies auto-immunes et faisant objet de plusieurs essais thérapeutiques.