17 resultados para solid phase extraction
Resumo:
Bioetanolin valmistus selluloosapitoisista raaka-aineista vaatii selluloosapolymeerien pilkkomisen liukoisiksi sokereiksi. Tämä voidaan toteuttaa entsymaattisella hydrolyysillä. Selluloosan pilkkomiseen tarkoitetut entsyymit, sellulaasit, ovat entsymaattisen hydrolyysin jälkeen sitoutuneet joko kiintoainefaasiin tai ovat nestemäisessä faasissa ns. vapaina entsyymeinä. Prosessin taloudellisuuden kannalta on erityisen tärkeää minimoida siinä käytettävien entsyymien tarve, sillä tehokkaat entsyymivalmisteet ovat suhteellisen kalliita. Yksi varteenotettava vaihtoehto bioetanoliprosessin saamiseksi taloudellisemmaksi on käytettyjen entsyymien talteenotto ja kierrätys. Työn tarkoituksena oli selvittää kirjallisuudesta, millaisia menetelmiä on kehitetty entsyymien talteenottoon ja kierrätykseen lignoselluloosasta valmistettavan bioetanolin valmistuksessa. Työssä on keskitytty tuoreisiin tutkimuksiin ja menetelmien käyttökelpoisuuteen ja taloudellisuuteen. Viime vuosina sellulaasien talteenotto- ja kierrätysmenetelmiä koskevat tutkimukset ovat keskittyneet pääasiassa käsittelemään nanopartikkelien avulla tapahtuvaa entsyymien immobilisointia, ultrasuodatusta, erilaisia desorptiomenetelmiä, kiinteän hydrolyysijäännöksen kierrättämistä, tuoreen substraatin lisäämistä sekä myös tislausvaiheen jälkeistä entsyymien kierrättämistä. Jotta kierrätysmenetelmä olisi tehokas, tulisi sen pyrkiä säilyttämään entsyymien aktiivisuuksia, sokerisaantoa menettämättä ja sisältää sekä neste-, että kiintoainefaasista tapahtuva kierrätys. Jokaisella kierrätysmenetelmällä on hyvät ja huonot puolensa. Entsyymien talteenottoastetta saadaan kuitenkin parannettua yhdistämällä erilaisia menetelmiä. Useista tutkimuksista huolimatta, taloudellisinta ja käyttökelpoisinta entsyymien talteenotto- ja kierrätysmenetelmää ei ole vielä saavutettu.
Resumo:
In the last decades, the chemical synthesis of short oligonucleotides has become an important aspect of study due to the discovery of new functions for nucleic acids such as antisense oligonucleotides (ASOs), aptamers, DNAzymes, microRNA (miRNA) and small interfering RNA (siRNA). The applications in modern therapies and fundamental medicine on the treatment of different cancer diseases, viral infections and genetic disorders has established the necessity to develop scalable methods for their cheaper and easier industrial manufacture. While small scale solid-phase oligonucleotide synthesis is the method of choice in the field, various challenges still remain associated with the production of short DNA and RNA-oligomers in very large quantities. On the other hand, solution phase synthesis of oligonucleotides offers a more predictable scaling-up of the synthesis and is amenable to standard industrial manufacture techniques. In the present thesis, various protocols for the synthesis of short DNA and RNA oligomers have been studied on a peracetylated and methylated β-cyclodextrin, and also on a pentaerythritol-derived support. On using the peracetylated and methylated β-cyclodextrin soluble supports, the coupling cycle was simplified by replacement of the typical 5′-O-(4,4′-dimethoxytrityl) protecting group with an acid-labile acetal-protected 5′-O-(1-methoxy-1-methylethyl) group, which upon acid-catalyzed methanolysis released easily removable volatile products. For this reason monomeric building blocks 5′-O-(1-methoxy-1-methylethyl) 3′-(2-cyano-ethyl-N,N-diisopropylphosphoramidite) were synthesized. Alternatively, on using the precipitative pentaerythritol support, novel 2´-O-(2-cyanoethyl)-5´-O-(1-methoxy-1-methylethyl) protected phosphoramidite building blocks for RNA synthesis have been prepared and their applicability by the synthesis of a pentamer was demonstrated. Similarly, a method for the preparation of short RNAs from commercially available 5´-O-(4,4´-dimethoxytrityl)-2´-O-(tert-butyldimethyl-silyl)ribonucleoside 3´-(2-cyanoethyl-N,N-diisopropylphosphoramidite) building blocks has been developed