4 resultados para LYVE-1
em Université de Lausanne, Switzerland
Resumo:
Résumé du travail de thèse Introduction : Les différentes cellules endothéliales du lit vasculaire ont de nombreuses similitudes fonctionnelles et morphologiques. Cependant, elles présentent également une importante hétérogénéité structurelle et fonctionnelle qui peut avoir des implications notamment dans l'angiogenèse et le développement des maladies cardio-vasculaires. Peu d'études ont été publiées au sujet de l'expression et de la distribution des marqueurs endothéliaux dans les tissus humain normaux. Objectif : Nous avons étudié l'expression immunohistochimique des marqueurs endothéliaux CD31, CD34, vWF et Fli-1 dans les vaisseaux périphériques du rein, du poumon, de la rate, du foie, du cour et des gros vaisseaux ; incluant l'aorte, la veine cave inférieure, l'artère rénale ainsi que les artères et veines pulmonaires et fémorales. Matériel et méthodes : Les échantillons tissulaires ont été obtenus à partir de matériel d'autopsie et de biopsies. Le matériel a été fixé en formaline et inclus en paraffine. Les coupes de paraffine ont été colorées immunohistochimiquement avec CD31, CD34 et vWF. Les biopsies ont également été colorées immunohistochimiquement avec Fli-1, D2-40 et Lyve-1. Résultats : L'expression immunohistochimique de ces marqueurs est hétérogène dans les différents organes étudiés. Dans le rein, l'endothélium fenêtré des glomérules exprime fortement CD31 et CD34. Par contre, il n'exprime pas ou alors de manière faible et focale vWF. Dans le poumon, les capillaires alvéolaires expriment fortement CD31 et CD34 mais sont habituellement négatifs pour le vWF. L'expression de vWF augmente graduellement avec le calibre vasculaire dans le poumon. Les sinusoïdes de la rate expriment CD31 de manière diffuse mais ils n'expriment pas CD34. Les sinusoïdes du foie expriment CD31 de part et d'autre des lobules. Par contre, CD34 est exprimé seulement dans la région périportale. L'expression de Fli-1 dans les cellules endothéliales est ubiquitaire et ne varie pas suivant le type de vaisseau ou d'organe. Fli-1 est également exprimé dans d'autres types de cellules, essentiellement des lymphocytes. D2-40 est exprimé seulement dans l'endothélium des vaisseaux lymphatiques. L'expression de Lyve-1 dans ce matériel de routine était inconstante et non reproductible. Conclusion : Ces résultats indiquent que l'expression des marqueurs endothéliaux CD31, CD34 et vWF est hétérogène dans le lit vasculaire et qu'elle varie entre différents vaisseaux et différents compartiments anatomiques du même organe. D2-40 ne marque que les cellules endothéliales lymphatiques.
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Kaposiform hemangioendothelioma (KHE) and tufted angioma (TA) are rare tumors mainly occurring in early childhood. Our recent results showed that ectopic overexpression of human Prox1 gene, a lymphatic endothelial nuclear transcription factor, promoted an aggressive behavior in 2 murine models of KHE. This dramatic Prox1-induced phenotype prompted us to investigate immunohistochemical staining pattern of Prox1, podoplanin (D2-40), LYVE-1, and Prox1/CD34 as well as double immunofluorescent staining pattern of LYVE-1/CD31 in KHE and TA, compared with other pediatric vascular tumors. For this purpose, we examined 75 vascular lesions: KHE (n=18), TA (n=13), infantile hemangioma (n=13), pyogenic granuloma (n=18), and granulation tissue (n=13). Overall, KHE and TA shared an identical endothelial immunophenotype: the neoplastic spindle cells were Prox1, podoplanin, LYVE-1, CD31, and CD34, whereas endothelial cells within glomeruloid foci were Prox1, podoplanin, LYVE-1, CD31, and CD34. The lesional cells of all infantile hemangiomas and pyogenic granulomas were negative for Prox1 in the presence of positive internal control. These findings provide immunophenotypic evidence to support a preexisting notion that KHE and TA are closely related, if not identical. Overall, our results show, for the first time, that Prox1 is an immunohistochemical biomarker helpful in confirming the diagnosis of KHE/TA and in distinguishing it from infantile hemangioma and pyogenic granuloma.
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BACKGROUND: In vivo studies demonstrate that the Prox1 transcription factor plays a critical role in the development of the early lymphatic system. Upon Prox1 expression, early lymphatic endothelial cells differentiate from the cardinal vein and begin to express lymphatic markers such as VEGFR-3, LYVE-1 and Podoplanin. Subsequent in vitro studies have found that differentiated vascular endothelial cells can be reprogrammed by Prox1 to express a lymphatic gene profile, suggesting that Prox1 can initiate the expression of a unique gene signature during lymphangiogenesis. While the in vitro data suggest that gene reprogramming occurs upon Prox1 expression, it is not clear if this is a direct result of Prox1 in vascular endothelial cells in vivo. RESULTS: Overexpression of Prox1 in vascular endothelial cells during embryonic development results in the reprogramming of genes to that of a more lymphatic signature. Consequent to this overexpression, embryos suffer from gross edema that results in embryonic lethality at E13.5. Furthermore, hemorrhaging and anemia is apparent along with clear defects in lymph sac development. Alterations in junctional proteins resulting in an increase in vascular permeability upon Prox1 overexpression may contribute to the complications found during embryonic development. CONCLUSION: We present a novel mouse model that addresses the importance of Prox1 in early embryonic lymphangiogenesis. It is clear that there needs to be a measured pattern of expression of Prox1 during embryonic development. Furthermore, Prox1 reprograms vascular endothelial cells in vivo by creating a molecular signature to that of a lymphatic endothelial cell.
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Bone marrow-derived endothelial progenitor cells (EPCs) infiltrate into sites of neovascularization in adult tissues and mature into functional blood endothelial cells (BECs) during a process called vasculogenesis. Human marrow-derived EPCs have recently been reported to display a mixed myeloid and lymphatic endothelial cell (LEC) phenotype during inflammation-induced angiogenesis; however, their role in cancer remains poorly understood. We report the in vitro differentiation of human cord blood CD133(+)CD34(+) progenitors into podoplanin(+) cells expressing both myeloid markers (CD11b, CD14) and the canonical LEC markers vascular endothelium growth factor receptor 3 (VEGFR-3), lymphatic vessel endothelial hyaluronan receptor 1 (LYVE-1), and prospero homeobox 1 (PROX-1). These podoplanin(+) cells displayed sprouting behavior comparable to that of LECs in vitro and a dual hemangiogenic and lymphangiogenic activity in vivo in an endothelial cell sprouting assay and corneal vascularization assay, respectively. Furthermore, these cells expressed vascular endothelium growth factor (VEGF) family members A, -C, and -D. Thus, bone-marrow derived EPCs stimulate hemangiogenesis and lymphangiogenesis through their ability to differentiate into LECs and to produce angiogenic factors. Importantly, plasma from patients with breast cancer induced differentiation of CD34(+) cord blood progenitors into hemangiogenic and lymphangiogenic CD11b(+) myeloid cells, whereas plasma from healthy women did not have this effect. Consistent with these findings, circulating CD11b(+) cells from breast cancer patients, but not from healthy women, displayed a similar dual angiogenic activity. Taken together, our results show that marrow-derived EPCs become hemangiogenic and lymphangiogenic upon exposure to cancer plasma. These newly identified functions of bone-marrow derived EPCs are expected to influence the diagnosis and treatment of breast cancer.