5 resultados para 25H

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采用提拉法(CZ)生长了质量优异的Tm:YAG晶体.部分晶片在1000℃的空气气氛中退火25h.借助光学显微镜、扫描电子显微镜(SEM),结合化学腐蚀法,对Tm:YAG晶体退火前后(111)面的缺陷特征进行了研究.Tm:YAG晶体(111)面的位错腐蚀坑呈三角形.在偏光显微镜下观察了退火前后Tm:YAG晶体(111)面的应力双折射.同时应用高分辨X射线衍射法测定了晶体的完整性.实验结果表明,长时间空气气氛下高温退火有效降低了晶体中总的位错密度,提高了晶体质量.

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本文以全球变化对绿洲水文循环影响为主线,分析了地处干旱区的绿洲在全球变化下的演变趋势。以塔里木盆地北部渭干河绿洲为例,探讨了其水量平衡、非灌溉土壤积盐特性、隐域性盐化草甸植被NPP,以及绿洲土地利用/覆被变化对全球变化的响应。从不同时间尺度上分析了全球变化的两大驱动因子,气候变化和人类活动对绿洲演化的影响。运用系统动力学模型模拟了未来30年绿洲土地覆被变化在上述两驱动因子的作用下的动态演变过程。其主要结论如下: 1、从生态学的角度,绿洲可定义为:存在于干旱、半干旱区的依赖于水源而生存的隐域性绿色景观.地质时期,绿洲的演化由气候等自然因子起决定作用;人类历史时期,在气候等自然因素的大背景下,人类活动对绿洲演变的作用越来越大;近百年来,绿洲的演变则主要受人为活动干扰。 2、在不改变绿洲现有土地利用格局和水资源利用率的情况下,当年平均气温升高2.5℃,无论降水增加200%或不增加,绿洲的水资源量都将出现负平衡,全球变化将使绿洲面临更为严重的水资源短缺。 3、绿洲自然土壤0-5 0cm土层积盐速率对全球变化的响应程度依地下水埋深的大小而有所差异。地下水埋深较小,积盐速率随温度的升高增加较明显;地下水埋深较大时,积盐速率变化不明显。当地下水埋深>2m,地表积盐速率不再随气候变化而变化.地下水埋深h=2m为渭干河绿洲非灌溉土壤地表积盐速率对全球变化响应的临界深度。 4、根据绿洲地下水埋深与植被NPP的相关关系,推导出了估算盐化草甸植被NPP的模型: NPP=-O. 991+0. 0005Eo (h-0. 25h^2+0. 021h^3) +5. 276EXP (-0. 651h) 并分别估算了当前及全球变化下的NPP值。盐化草甸植被NPP随地下水埋深的增加呈指数下降。全球变化下,地下水埋深较大时,NPP的增加较明显;地下水埋深较小时,NPP的增加不明显。 5、灵敏度分析表明:NPP对地下水埋深h的变化比对地下水矿化度变化为更敏感。h=3. 3m为渭干河绿洲盐化草甸植被的胁迫深度。 6、系统动力学模型模拟表明,渭干河绿洲耕地面积的增减受水资源利用率和人口数量变化的制约。全球变化下,由于水文状况的改变,未来30年将导致绿洲耕地面积增幅下降4. 5-5.1%。绿洲水文状况和人口数量变化是决定土地利用格局变化的关键驱动因素。 7、绿洲灌溉土地的优化模式为,耕地:林地:改良草地=70: 23:7;种植业(耕地)内部的比例为,粮食作物:经济作物:人工草地=46: 31: 23。

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A novel Dawson-type polyoxometalate supramolecular architecture of the formula [4,4'-H(2)bipy](2.5)center dot[4,4'-Hbipy]center dot[P2W18O62]center dot 6.25H(2)O (4,4'-bipy = 4,4'-bipyridine) has been hydrothermally synthesised and characterised by means of elemental analysis, IR, CV and X-ray single-crystal diffraction. X-ray crystallography indicates that the title compound consists of Dawson-type polyoxoaions [P2W18O62](6-), water molecules and 4,4'-bipy units. The polyoxoanion clusters together with 4,4'-bipy units and water molecules to construct the three-dimensional supramolecular network through hydrogen bonds. The crystal structure analyses reveal that water molecules and 4,4'-bipy units play the important role on the packing arrangements of crystals. Cyclic voltammetry shows that the title compound exhibits three chemically reversible steps

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本文在实验室内研究了温度和饵料对中华哲水蚤的生殖和生长的影响,结果表明 1)中华哲水蚤雌体的产卵模式是间歇式的,但产卵和间歇的天数因个体而异。产卵时间为1~9天不等,最长为9天;间歇时间一般为1~2天,最长为5~6天。2)中华哲水蚤雌体的产卵量对食物变化的响应为3~5天,饥饿6天后不产卵,添加饵料3天后恢复产卵。饥饿降低了雌体的生殖力,饵料质量对产卵量有明显影响。3)孵化速度随着温度的降低而减慢,18.7 ℃时达到最大孵化率时间大约为25h;16.04 ℃时约为43.5h;7 ℃时约为93.4h;当卵在3.7 ℃时,孵化率仅达到13.9%。4)根据现有的结果,NI、NII的发育时间随着温度降低而延长,7.1 ℃、9.1 ℃、15.4 ℃下以卵到NIII的发育时间约为8-9、6-7、4.5天。5)以骨条藻为饵料的幼体发育时间明显比以三角褐指藻为饵料的发育时间短,尤其在NII、NIV其表现最为明显,其中以骨条藻为饵料的中华哲水蚤的世代时间为27天。中华哲水蚤整个幼体的生长时间是不“等时”的,其中NI和NII的发育时间较短,NIII和NIV的发育时间较长,NV-CII倾向于等时生长,CII-CV发育时间又开始延长,骨条藻为饵料的世代组中,CIII的发育时间最长。6)对中华哲水蚤整个幼体的发育来说,平均生长率基本随着发育期的增长而增大。平均生长率随着饵料组分的不同而不同。2000年6月至2001年5月,在野外主要调查了南黄海(鳀鱼产卵场)中华哲水蚤的产卵率和孵化率,一年该种的总平均产卵率春季最高,夏季次之,再者冬季,秋季最长。孵化率大小范围为(75%-100%),推测中华哲水蚤的交配行为是较成功的,所调配海域为中华哲水蚤提供了较好的食物资源。

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为研究鄂霍次克海天然气水合物区沉积物古菌、甲烷厌氧氧化古菌和硫酸盐还原细菌的多样性分布,我们以PCR技术为基础构建mcrA、dsrAB和古菌16S rRNA 基因文库。对所获得的序列进行系统进化和统计学分析发现:鄂霍次克海古菌类群主要为Marine Benthic Group D (MBG-D)、Marine Benthic Group B (MBG-B)、Marine Crenarchaeotic Group I(MG- I),另外少量古菌16S rRNA基因序列为Anaerobic Methanotrophs 2c(ANME-2c),主要分布在LV39-25H岩心的表层沉积物中。LV39-40H岩心表层的古菌群落结构与其他六个层位古菌群落结构相比有着显著的差异。mcrA基因序列主要为催化甲烷厌氧氧化的古菌ANME-2(c和d簇),在所研究的各个层位的沉积物中均广泛分布。少量的ANME-1(a簇)发现于LV39-40H岩心表层以下的沉积物中。产甲烷古菌数目不多,集中分布在LV39-25H岩心200cm和LV39-40H岩心180cm的沉积物中。dsrAB基因文库分析表明硫酸盐还原细菌种类丰富,表层沉积物中硫酸盐还原细菌多样性最高。在两个岩心所有层位的沉积物中都有一定数量的克隆属于DSS簇,它们可能与ANME共生催化甲烷的厌氧氧化作用。总之,所有数据表明在鄂霍次克海天然气水合物区存在着较活跃的甲烷厌氧氧化作用,揭示了参与甲烷厌氧氧化作用的微生物群落结构和多样性。 为研究东海内陆架闽浙沿岸泥质区不同深度沉积物中古菌群落垂向分布特征,通过古菌16S rRNA 基因文库共得到473个有效克隆50个OTUs (Operational Taxonomic Units)。16S rRNA基因序列系统进化和统计分析发现古菌分别归属于泉古生菌(Crenarchaeota)和广古生菌(Euryarchaeota),其中以Miscellaneous Crenarchaeotic Group(MCG)为主,仅含少量的MBG-B、South African Gold Mine Euryarchaeotic Group(SAGMEG)、 ANME-3、MG- I和MBG-D。该泥质区沉积物可能存在由ANME-3催化的甲烷厌氧氧化作用,同源序列分析表明其古菌群落分布与周边环境有较大联系。UniFrac与沉积物环境因子分析表明该泥质区古菌群落垂向分布与沉积物有机质含量和粒度变化密切相关。 通过对比发现,鄂霍次克海天然气水合物区甲烷厌氧氧化古菌主要为ANME-2和少量的ANME-1,而东海内陆架泥质区甲烷厌氧氧化古菌仅为极少量的ANME-3;鄂霍次克海天然气水合物区广古生菌和泉古生菌数量各占一半,主要为MBG-D、MBG-B、MG-I。东海内陆架泥质区沉积物古菌序列主要为泉古生菌(MCG)。海域类型的不同以及有机碳含量等环境因子的差异可能是这两个海域古菌群落结构差异的主要原因.