水飞蓟原生质体培养形成愈伤组织及组织培养再生植株

本论文对药用植物水飞蓟Silybum marianum Gaertn 进行了原生质体培养和组织培养的研究，获得如下结果： 1、以水飞蓟叶片愈伤组织为材料，系统地研究了植物材料生理状态，酶液配比及酶的浓度、酶解时间长短等对原生质体产率的影响。探讨了原生质体培养过程中材料的生理状态、激素、附加物及培养方法对于原生质体分裂频率的影响，还比较分析了培养后期不加液及加各种细胞培养液对原生质体来源的细胞团的影响，最后进行了愈伤组织分化的诱导。选取继代一年的水飞蓟叶愈伤组织转代十天后挑选愈伤组织表面生长旺盛的细胞层置于Onozuka R-103% Macerozyme R-10 0.8%的CPW混合酶液（PH 5.6～5.3）中，30℃下酶解5小时后所得原生质体产率最高。适合于水飞蓟原生质体培养的基本培养基为TCCW烟草原生质体培养基~[18]。用低融点琼脂糖（0.3%）平板培养法培养得到的分裂频率显著高于液体浅层法。在培养基中加入羟脯氨酸（100mg/l）和谷氨酰胺（200mg/l）可促进原生质体分裂。在飞蓟原生质体培养中能获得最高分裂频率（35.4%）的激素组合为2.4-D、1mg/l Kn0.5mg/l。在培养过程中每隔二周必须加液，否则细胞团褐化并全部死亡，同时要求降低细胞培养液的Kn浓度（由0.5mg/l、降到0.1mg/l）才能使细胞团继续长大。从水飞蓟原生质体培养得到的愈伤组织色浅黄，结构疏松，转至MS附加NAA0.8mg/l、6－BA 2mg/l、水解酪蛋白200mg/l的固体培养基上愈伤组织表面出现许多绿色芽点，但尚未得到再生植株。 2、以萌发两周后的水飞蓟种子无菌苗为材料，切取下胚轴于MS附加NAA0.8mg/l、6－BA0.5mg/l、水解酪蛋白200mg/l的固体培养基上诱导出愈伤组织，再转入MS附加NAA0.8mg/l、6－BA2mg/l、水解酪蛋白200mg/l的分化培养基后，愈伤组织表面分化出芽，再生苗的频率为75%，然后移至MS附加NAA0.5mg/l、IBA0.1mg/l、水解酪蛋白200mg/l的培养基上分化出大量的根，并得到了大量健壮的植株。