285 resultados para Sponges


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Little is known about the microbial diversity associated with marine macroorganisms, despite the vital role microorganisms may play in marine ecosystems. The aim of the present study was to investigate the diversity of bacteria and fungi isolated from eight marine invertebrate and one algae samples. Data derived from ARDRA and sequencing analyses allowed the identification of marine-derived microorganisms isolated from those samples. Microbial strains identified up to the genus level revealed 144 distinct ribotypes out of 256 fungal strains and 158 distinct ribotypes out of 181 bacterial strains. Filamentous fungi were distributed among 24 different genera belonging to Ascomycota, Zygomycota and Basidiomycota, some of which had never been reported in the literature as marine invertebrate-inhabiting fungi (Pestalotiopsis, Xylaria, Botrysphaeria and Cunnninghamella). Bacterial isolates were affiliated to 41 different genera, being Bacillus, Ruegeria, Micrococcus, Pseudovibrio and Staphylococcus the most abundant ones. Results revealed an unexpected high microbial diversity associated to the macroorganisms which have been collected and suggested the selection of certain microbial taxonomic groups according to the host. The combined data gathered from this investigation contribute to broaden the knowledge of microbial diversity associated to marine macroorganisms, including as a promising source for the discovery of new natural products. (C) 2009 Elsevier GmbH. All rights reserved.

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Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP)

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The hydroid Zyzzyzus warreni is usually found in shallow coastal waters forming aggregations of solitary polyps embedded in demosponges. Early life history transformations and settlement responses by the actinulae of this hydroid were studied in the laboratory using 13 species of sponges and 2 species of algae collected in the Sao Sebastiao Channel (Brazil) as substrata. The absence of oral tentacles and mouth in the actinulae and early events of metamorphosis suggest that these larvae are unable to spend long periods in the plankton and attach quickly near conspecifics when a preferred substratum is encountered. The time required for settlement and the number of elicited settlings indicated four settlement responses: (a) frequent and short-time settlement, in actinulae exposed to Halichondria cebimarensis, Mycale angulosa, M. aff. americana, M. laxissima (skeleton) and Tedania ignis; (b) moderate and delayed settlement, in actinulae exposed to Aplysina caissara, A. fulva, Haliclona melana and M. microsigmatosa; (c) no settlement, in actinulae exposed to Suberites aurantiacus and to the algae Hypnea musciformis and Sargassum cymosum; and (d) lethal response, in actinulae exposed to Amphimedon viridis, Aplysilla rosea, Dragmacidon reticulatum and M. laxissima. These responses indicate a considerable degree of species discrimination by the actinulae and are consistent with substrata used by the hydroid in the natural environment.

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Medscape, LLC is pleased to provide online continuing medical education (CME) for this journal article, allowing clinicians the opportunity to earn CME credit. This activity has been planned and implemented in accordance with the Essential Areas and policies of the Accreditation Council for Continuing Medical Education through the joint sponsorship of Medscape, LLC and Emerging Infectious Diseases. Medscape, LLC is accredited by the Accreditation Council for Continuing Medical Education (ACCME) to provide CME for physicians. Medscape, LLC designates this educational activity for a maximum of 0.5 AMA PRA Category 1 Credits™. Physicians should only claim credit commensurate with the extent of their participation in the activity. All other clinicians completing this activity will be issued a certificate of participation. To participate in this journal CME activity: (1) review the learning objectives and author disclosures; (2) study the education content; (3) take the post-test and/or complete the evaluation at http://www.medscape.com/cme/eidExternal Web Site Icon; (4) view/print certificate. Learning Objectives Upon completion of this activity, participants will be able to: Describe the mechanism of infection for adiaspiromycosis. Identify the age group most susceptible to ocular adiaspiromycosis. Describe presenting symptoms associated with ocular adiaspiromycosis. Describe the frequency of ocular lesions associated with adiaspiromycosis. Identify risk factors for ocular adiaspiromycosis.

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Die technische Silikatproduktion erfordert in der Regel hohe Temperaturen und extreme pH-Werte. In der Natur hingegen haben insbesondere Kieselschwämme die außergewöhnliche Fähigkeit, ihr Silikatskelett, das aus einzelnen sogenannten Spiculae besteht, enzymatisch mittels des Proteins Silicatein zu synthetisieren. rnIm Inneren der Spiculae, im zentralen Kanal, befindet sich das Axialfilament, welches hauptsächlich aus Silicatein-α aufgebaut ist. Mittels Antikörperfärbungen und Elektronenmikroskopischen Analysen konnte festgestellt werden, dass Silicatein in mit Kieselsäure-gefüllten Zellorganellen (silicasomes) nachzuweisen ist. Mittels dieser Vakuolen kann das Enzym und die Kieselsäure aus der Zelle zu den Spiculae im extrazellulären Raum befördert werden, wo diese ihre endgültige Länge und Dicke erreichen. Zum ersten Mal konnte nachgewiesen werden, dass rekombinant hergestelltes Silicatein-α sowohl als Siliciumdioxid-Polymerase als auch Siliciumdioxid-Esterase wirkt. Mittels Massenspektroskopie konnte die enzymatische Polymerisation von Kieselsäure nachverfolgt werden. Durch Spaltung der Esterbindung des künstlichen Substrates Bis(p-aminophenoxy)-dimethylsilan war es möglich kinetische Parameter der Siliciumdioxid-Esterase-Aktivität des rekombinanten Silicateins zu ermitteln.rnZu den größten biogenen Silikatstukuren auf der Erde gehören die Kieselnadeln der Schwammklasse Hexactinellida. Nadelextrakte aus den Schwammklassen Demospongien (S. domuncula) und Hexactinellida (M. chuni) wurden miteinander verglichen um die potentielle Existenz von Silicatein oder Silicatein-ähnliche Molekülen und die dazu gehörige proteolytischen Aktivität nachzuweisen. Biochemische Analysen zeigten, dass das 27 kDA große isolierte Polypeptid in Monoraphis mehrere gemeinsame Merkmale mit den Silicateinen der Demospongien teilt. Dazu gehören die Größe und die Proteinase-Aktivität. rnUm die Frage zu klären, ob das axiale Filament selbst zur Formbildung der Skelettelemente beiträgt, wurde ein neues mildes Extraktionsverfahren eingeführt. Dieses Verfahren ermöglichte die Solubilisierung des nativen Silicateins aus den Spiculae. Die isolierten Silicateine lagen als Monomere (24 kDa) vor, die Dimere durch nicht-kovalente Bindungen ausbildeten. Darüber hinaus konnten durch PAGE-Gelelektrophorese Tetramere (95 kDa) und Hexamere (135 kDa) nachgewiesen werden. Die Monomere zeigten eine beträchtliche proteolytische Aktivität, die sich während der Polymerisationsphase des Proteins weiter erhöhte. Mit Hilfe der Lichtmikroskopie und Elektronenmikroskopie (TEM) konnte die Assemblierung der Proteine zu filamentartigen Strukturen gezeigt werden. Die Selbstorganisation der Silicatein-α-Monomeren scheint eine Basis für Form- und Musterbildung der wachsenden Nadeln zu bilden.rn Um die Rolle des kürzlich entdeckten Proteins Silintaphin-1, ein starker Interaktionspartner des Silicatein-α, während der Biosilifizierung zu klären, wurden Assemblierungs-Experimente mit den rekombinanten Proteinen in vitro durchgeführt. Zusätzlich wurde deren Effekt auf die Biosilikatsynthese untersucht. Elektronenmikroskopische Analysen ergaben, dass rekombinantes Silicatein-α zufällig verteilte Aggregate bildet, während die Koinkubation beider Proteine (molekulares Verhältnis 4:1) über fraktal artige Strukturen zu Filamenten führt. Auch die enzymatische Aktivität der Silicatein-α-vermittelte Biosilikatsynthese erhöhte sich in Gegenwart von Silintaphin-1 um das 5,3-fache. rn

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Metabolomic analysis has shown the chemical richness of the sponge-associated actinomycetes Streptomyces sp. SBT349, Nonomureae sp. SBT364, and Nocardiopsis sp. SBT366. The genomes of these actinomycetes were sequenced and the genomic potential for secondary metabolism was evaluated. Their draft genomes have sizes of 8.0, 10, and 5.8Mb having 687, 367, and 179 contigs with a GC content of 71.6, 70.7, and 72.7%, respectively. Moreover, antiSMASH 3.0 predicted 108, 149, and 75 secondary metabolite gene clusters, respectively which highlight the metabolic capacity of the three actinomycete species to produce diverse classes of natural products.

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v.42 (1915) text