Preservation of Honey Bee (Apis mellifera L.) Semen

L’abeille domestique (Apis mellifera Linnaeus) joue un rôle crucial comme pollinisateur dans l’industrie de l’agriculture. Cependant, durant les dernières décennies, une mortalité des colonies d’abeilles a été observée partout à travers le monde. La conservation du sperme d’abeille est un outil efficace pour sauvegarder la diversité génétique. Sa conservation est possible à température pièce, mais la cryoconservation serait une meilleure méthode pour la conservation à long terme. Notre objectif général est de développer une méthode de cryoconservation de la semence d’abeille. L’hypothèse no.1 était que la cryoconservation de la semence d’abeille est plus efficace à long terme que les températures au-dessus de 0 °C. Nous avons évalué l’efficacité, basé sur la viabilité des spermatozoïdes, de deux températures de conservation: -196 °C et 16 °C. Après un an de conservation, la semence congelée avait une meilleure viabilité comparée à 16°C (76% ± 5% vs 0%; p < 0,05). Par la suite, la spermathèque des reines inséminées avec la semence cryoconservée a été évaluée par la migration des spermatozoïdes ainsi que la viabilité des spermatozoïdes. Il y avait beaucoup de variabilités dans nos résultats. Nous n’avons pas été en mesure de vérifier si l’ajout de la centrifugation après la conservation améliore la fertilité des reines après insémination. Toutefois, nos résultats confirment que la cryoconservation est une technique efficace pour conserver la semence d’abeille à long terme.

Sequential exhaustive extraction of a Mollisol soil, and characterizations of humic components, including humin, by solid and solution state NMR.

A comprehensive sequential extraction procedure was applied to isolate soil organic components using aqueous solvents at different pH values, base plus urea (base-urea), and finally dimethylsulfoxide (DMSO) plus concentrated H2SO4 (DMSO-acid) for the humin-enriched clay separates. The extracts from base-urea and DMSO-acid would be regarded as 'humin' in the classical definitions. The fractions isolated from aqueous base, base-urea and DMSO-acid were characterized by solid and solution state NMR spectroscopy. The base-urea solvent system isolated ca. 10% (by mass) additional humic substances. The combined base-urea and DMSO-acid solvents isolated ca. 93% of total organic carbon from the humin-enriched fine clay fraction (<2 ?m). Characterization of the humic fractions by solid-state NMR spectroscopy showed that oxidized char materials were concentrated in humic acids isolated at pH 7, and in the base-urea extract. Lignin-derived materials were in considerable abundance in the humic acids isolated at pH 12.6. Only very small amounts of char-derived structures were contained in the fulvic acids and fulvic acids-like material isolated from the base-urea solvent. After extraction with base-urea, the 0.5 m NaOH extract from the humin-enriched clay was predominantly composed of aliphatic hydrocarbon groups, and with lesser amounts of aromatic carbon (probably including some char material), and carbohydrates and peptides. From the combination of solid and solution-state NMR spectroscopy, it is clear that the major components of humin materials, from the DMSO-acid solvent, after the exhaustive extraction sequence, were composed of microbial and plant derived components, mainly long-chain aliphatic species (including fatty acids/ester, waxes, lipids and cuticular material), carbohydrate, peptides/proteins, lignin derivatives, lipoprotein and peptidoglycan (major structural components in bacteria cell walls). Black carbon or char materials were enriched in humic acids isolated at pH 7 and humic acids-like material isolated in the base-urea medium, indicating that urea can liberate char-derived material hydrogen bonded or trapped within the humin matrix.